استفاده از پسماندهای ارزان قیمت جهت تکثیر باکتری Paenibacillus polymyxa سویه N179

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 هیئت علمی گروه گیاهپزشکی دانشگاه شهید مدنی آذربایجان

2 گروه گیاهپزشکی، دانشگاه شهید مدنی آذربایجان، تبریز، ایران

3 گروه گیاهپزشکی دانشگاه شهید مدنی آذربایجان

چکیده

در تحقیق حاضر باکتری Paenibacillus polymyxa استرین N179 که قبلا پتانسیل بیوکنترل آن در شرایط گلخانه‌ای و مزرعه به اثبات رسیده بود، انتخاب شد و تلاش شد تا با استفاده از محصولات ثانویه ارزان قیمت صنایع غذایی محیط کشتی جهت تکثیر با کیفیت و ارزان قیمت این استرین معرفی شود. میزان تکثیر این باکتری در محیط‌های کشت مختلف به صورت معنی‌داری متفاوت بود. همچنین خاصیت آنتاگونیستی سلولهای حاصل از محیط‌های کشت‌ مختلف هم در شرایط درون شیشه و هم در شرایط گلخانه متفاوت بود. سلولهای بدست آمده از محیط‌های کشت M4 (حاوی تفاله خرما و کنجاله کنجد) و M10 (نشاسته و کنجاله کنجد) در شرایط درون شیشه بیشترین خاصیت بازدارندگی را نسبت به قارچ Rhizoctonia solani، از خود نشان دادند. مقاومت سلولهای بدست آمده از محیط‌های کشت بدست آمده نسبت به فرآیند فرمولاسیون و زنده مانی در طول مدت انبارداری نیز بررسی و مشخص شد سلولهای بدست آمده از محیط‌های کشت M2، M7، M9، و LB بیشترین مقاومت را در در طول دوره انبارداری از خود نشان دادند. علاوه بر این کارایی فرمولاسیون‌‌های تهیه شده بعد از گذشت سه ماه در شرایط گلخانه‌ای مورد بررسی قرار گرفت و مشخص شد که فرمولاسیون تهیه شده از محیط‌های کشت M5 و LB بیشترین کارآیی را داشتند و به خوبی بیماری را کنترل کردند. با این وجود با در نظر گرفتن مجموع نتایج محیط کشت M9 بهترین عملکرد را از خود نشان داد.

کلیدواژه‌ها


Agrios GN. (2005). Plant pathology. 5th edition. Elsevier academic press. Amesterdam.
Alizadeh M, Vasebi Y, Safaie N (2020) Microbial antagonists against plant pathogens in Iran: A review. Open Agriculture 5: 404–440.
Ashofteh F, Ahmadzadeh M, Fallahzadeh-Mamaghani V (2009) Effect of mineral components of the medium used to grow biocontrol strain UTPF61 of Pseudomonas fluorescens on its antagonistic activity against Sclerotinia wilt of sunflower and its survival during and after the formulation process. Journal of Plant Pathology 607–613.
Barratt BIP, Moran VC, Bigler F, Van Lenteren JC (2018) The status of biological control and recommendations for improving uptake for the future. BioControl 63: 155–167.
Costa E, Teixidó N, Usall J, Atarés E, Viñas I (2001) Production of the biocontrol agent Pantoea agglomerans strain CPA-2 using commercial products and by-products. Applied Microbiology and Biotechnology 56: 367–371.
Fallahzadeh-Mamaghani V, Golchin S, Shirzad A, Mohammadi H, Mohamadivand F (2021) Characterization of Paenibacillus polymixa N179 as a robust and multifunctional biocontrol agent. Biological Control 154: 104505.
Fallahzadeh V, Ahmadzadeh M. (2011) Fermentation thechnology of biological control agents. 2011, Tehran.
Ghasemi S, Ahmadzadeh M, Khodaian Cheghini F (2013) Culture medium designing for semi-industrial production of Bacillus subtilis UTB96. Biological control of pests and plant diseases 2: 149–160.
Heidari TF, Ahmadzadeh M, Moeinzadeh A (2011) Comparison of sugar beet and sugar cane molasses regarding their influence on production and efficiency of Pseudomonas fluorescens, the biocontrol agent of Sclerotinia sclerotiorum. Journal of sugar beet. 27(1): 39-52. (In persian)
Heydari A, Pessarakli M (2010) A review on biological control of fungal plant pathogens using microbial antagonists. Journal of biological sciences 10: 273–290.
Liu J, Li G, Sui Y (2017) Optimization of culture medium enhances viable biomass production and biocontrol efficacy of the antagonistic yeast, Candida diversa. Frontiers in microbiology 8: 2021.
Nicholson WL, Munakata N, Horneck G, Melosh HJ, Setlow P (2000) Resistance of Bacillus endospores to extreme terrestrial and extraterrestrial environments. Microbiology and molecular biology reviews 64: 548–572.
Schisler DA, Jackson MA, Bothast RJ (1991) Influence of nutrition during conidiation of Colletotrichum truncatum on conidial germination and efficacy in inciting disease in Sesbania exaltata. Phytopathology 81: 458–461.
Schisler DA, Slininger PJ, Behle RW, Jackson MA (2004) Formulation of Bacillus spp. for biological control of plant diseases. Phytopathology 94: 1267–1271.
Sharifi R, Ahmadzadeh M, Sharifi-Tehrani A, Fallahzadeh-Mamaghani V, Talebi-jahromi K (2008) Competition for iron uptake by fluorescent pseudomonads to control of Rhizoctonia solani kuhn causing agent of bean damping-off disease. Journal of Plant Protection 22(2); 183-195. (In perisan).
Shirzad A, Fallahzadeh-Mamaghani V, Pazhouhandeh M (2012) Antagonistic potential of fluorescent pseudomonads and control of crown and root rot of cucumber caused by Phythophtora drechsleri. The Plant Pathology Journal 28: 1–9.
Slininger PJ, Shea-Wilbur MA (1995) Liquid-culture pH, temperature, and carbon (not nitrogen) source regulate phenazine productivity of the take-all biocontrol agent Pseudomonas fluorescens 2-79. Applied microbiology and biotechnology 43: 794–800.
Stanbury PF, Whitaker A, Hall SJ (2013) Principles of fermentation technology. Elsevier. United Kingdom.