76043abf2ebed2c

تأثیر برخی مواد معدنی بر کارامدی بیوکنترلی Bacillus pumilus INR7 علیه Rhizoctonia solani عامل مرگ گیاهچۀ لوبیا

نوع مقاله: مقاله کامل

نویسندگان

1 دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه رازی، کرمانشاه

2 دانشیار، گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه رازی، کرمانشاه

3 استادیار، گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه رازی، کرمانشاه

چکیده

یکی از راهبردهایی که در امر تجاری سازی عوامل بیوکنترل در نظر گرفته می‌شود، بحث طراحی محیط کشت برای تولید انبوه این باکتری‌هاست. این پژوهش با هدف بررسی اثر برخی عناصر معدنی روی تولید زیست‌توده و فعالیت بیوکنترلی باکتریBacillus pumilus INR7 علیه Rhizoctonia solaniعامل مرگ گیاهچۀ لوبیا به اجرا درآمد. عناصر معدنی مورد استفاده در این پژوهش شامل آهن، روی، مس، بُر، کبالت، مولیبدن و منگنز بود که هر کدام در سه غلظت مورد استفاده قرار گرفتند. در این میان، غلظت متوسط و بیشینۀ آهن (36 و 72 میکرومول) و مس (7 و 14 میکرومول) و غلظت کمینۀ منگنز (5/12 میکرومول) به صورت معنی‌داری باعث افزایش جمعیت باکتری شدند. غلظت کمینه و متوسط روی (35 و 70 میکرومول) و بیشینۀ کبالت (14 میکرومول) باعث کاهش معنی‌دار جمعیت باکتری در مقایسه با محیط پایه M1 شدند. در آزمون گلخانه‌ای، عناصر آهن در غلظت متوسط (36) و مس در غلظت بیشینه (14 میکرومول) بیشترین اثر را در افزایش کارایی باکتری در کنترل بیماری مرگ گیاهچۀ لوبیا نشان دادند. در مقابل، غلظت‌های بیشینۀ آهن (72 میکرومول)، کمینۀ روی (35 میکرومول)، بیشینۀ منگنز (50 میکرومول) و متوسط مولیبدن (1/8 میکرومول) باعث کاهش معنی‌دار کارایی بیوکنترلی باکتری در مقایسه با محیط پایه M1 شدند. در مجموع، غلظت بهینه برای عناصر مورد استفاده مشابه نبود و حتی در مورد یک عنصر خاص بین غلظت بهینه برای تولید زیست‌توده و کارایی باکتری در بیوکنترل بیماری اختلاف وجود داشت.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Ardalan A, Abbasi S, Sharifi R (2015) Comparison of some commercial Bacillus strains on biological control of Bean damping- off caused by Rhizoctonia solani, Proceedings of the 8th Congress in Advances in Agricultural Research, University of Kurdestan, Sanandaj. (in Persian)
 Asaka O, Shoda M (1996) Biocontrol of Rhizoctonia solani damping-off of tomato with Bacillus subtilis RB14. Applied and Environmental Microbiology 62: 4081-4085.
Ashofteh F, Ahmadzadeh M, Fallahzadeh-Mamaghani V (2009) Effect of mineral components of the medium used to grow biocontrol strain UTPF61 of Pseudomonas fluorescens on its antagonistic activity against Sclerotinia wilt of sunflower and its survival during and after the formulation process. Journal of Plant Pathology 607-613.
Blom D, Fabbri C, Eberl L, Weisskopf L (2011) Volatile-mediated killing of Arabidopsis thaliana by bacteria is mainly due to hydrogen cyanide. Applied and Environmental Microbiology 77: 1000-1008.
Bruggen AHCv, Finckh MR (2016) Plant diseases and management approaches in organic farming systems. Annual Review of Phytopathology 54: 25-54.
Buhr TL, McPherson DC, Gutting BW (2008) Analysis of broth-cultured Bacillus atrophaeus and Bacillus cereusspores. Journal of Applied Microbiology 105: 1604-1613.
Costa E, Teixidó N, Usall J, Atarés E, Viñas I (2001) Production of the biocontrol agent Pantoea agglomerans strain CPA-2 using commercial products and by-products. Applied Microbiology and Biotechnology 56: 367-371.
Djavaheri M, Mercado-Blanco J, Versluis C, Meyer JM, Van Loon LC, Bakker PAHM (2012) Iron-regulated metabolites produced by Pseudomonas fluorescens WCS374r are not required for eliciting induced systemic resistance against Pseudomonas syringae pv. tomato in Arabidopsis. Microbiology Open 1: 311-325.
Duffy B, Défago G (1995) Influence of cultural conditions on spontaneous mutations in Pseudomonas fluorescens CHA0. Phytopathology 85: 1146.
Duffy BK, Défago G (1999) Environmental factors modulating antibiotic and siderophore biosynthesis by Pseudomonas fluorescens biocontrol strains. Applied and Environmental Microbiology 65: 2429-2438.
Flores ER, Pérez F, de la Torre M (1997) Scale-up of Bacillus thuringiensis fermentation based on oxygen transfer. Journal of Fermentation and Bioengineering 83: 561-564.
Grey B, Steck TR (2001) Concentrations of copper thought to be toxic to escherichia coli can induce the viable but nonculturable condition. Applied and Environmental Microbiology 67: 5325-5327.
Gu X-B, Zheng Z-M, Yu H-Q, Wang J, Liang F-L, Liu R-L (2005) Optimization of medium constituents for a novel lipopeptide production by Bacillus subtilis MO-01 by a response surface method. Process Biochemistry 40: 3196-3201.
Jeong H, Choi S-K, Kloepper JW, Ryu C-M (2014) Genome sequence of the plant endophyte Bacillus pumilus INR7, triggering induced systemic resistance in field crops. Genome Announcements 2: e01093-01114.
Kilian M, Steiner U, Krebs B, Junge H, Schmiedeknecht G, Hain R (2000) FZB24® Bacillus subtilis–mode of action of a microbial agent enhancing plant vitality. Pflanzenschutz-Nachrichten Bayer 1: 1.
Lewis JA (1991) Formulation and delivery systems of biocontrol agents with emphasis on fungi, The Rhizosphere and Plant Growth. Springer Nature, pp. 279-287.
Mahadtanap S, Sanguanser M, Cutler RW, Sardsud V, Anuntalabh S (2007) Control of anthracnose caused by Colletotrichum musae on Curcuma alismatifolia Gagnep. using antagonistic Bacillus spp. American Journal of Agricultural and Biological Sciences 2: 54-61.
Milner JL, Raffel SJ, Lethbridge BJ, Handelsman J (1995) Culture conditions that influence accumulation of zwittermicin A by Bacillus cereus UW85. Applied Microbiology and Biotechnology 43: 685-691.
Ownley BH, Trigiano RN (2016) Plant pathology concepts and laboratory exercises. CRC Press.
Posada-Uribe LF, Romero-Tabarez M, Villegas-Escobar V (2015) Effect of medium components and culture conditions in Bacillus subtilis EA-CB0575 spore production. Bioprocess and Biosystems Engineering 38: 1879-1888.
Safari Asl F, Rouhani H, Falahati Rastegar M, Jahanbakhsh V (2010) effect of C and N source on the growth and antifungal activity of Bacillus subtilis bs against Pythium aphanidermatum. Journal of Plant Protection 24: 53-61. (in Persian)
Sharifi R, Ahmadzadeh M, Sharifi Tehrani A, Fallahzadeh V (2006) Competition for iron uptake by fluorescent pseudomonads to control of Rhizoctonia solani kuhn causing agent of bean damping-off disease. Journal of Plant Protection 22: 183-195. (In Persian).
Sharifi R, Ryu CM (2017) Chatting with a tiny belowground member of the holobiome: communication between plants and growth-promoting rhizobacteria. Advances in Botanical Research 82: 135-160.
Slininger P, Jackson M (1992) Nutritional factors regulating growth and accumulation of phenazine 1-carboxylic acid by Pseudomonas fluorescens 2-79. Applied Microbiology and Biotechnology 37: 388-392.
Slininger PJ, Shea-Wilbur MA (1995) Liquid-culture pH, temperature, and carbon (not nitrogen) source regulate phenazine productivity of the take-all biocontrol agent Pseudomonas fluorescens 2-79. Applied Microbiology and Biotechnology 43: 794-800.
Smaldone GT, Revelles O, Gaballa A, Sauer U, Antelmann H, Helmann JD (2012) A global investigation of the Bacillus subtilis iron-sparing response identifies major changes in metabolism. Journal of Bacteriology 194: 2594-2605.
Weinberg ED (1969) Biosynthesis of secondary metabolites: roles of trace metals. Advances in Microbial Physiology 4: 1-44.