76043abf2ebed2c

کنترل بیولوژیک نماتدMeloidogyne javanica توسط دو عامل آنتاگونیست Pseudomonas fluorescens CHA0, Trichoderm harzianum BI در گیاه گوجه‌فرنگی

نوع مقاله: مقاله کامل

نویسندگان

1 کارشناسی ارشد (مربی)، دانشگاه خلیج فارس

2 دانشیار، پردیس ابوریحان دانشگاه تهران

3 استادیار، پردیس ابوریحان دانشگاه تهران

چکیده

  نماتدهای مولد گره ریشه (.Meloidogyne spp) از مهم‌ترین نماتدهای پارازیت گیاهی می‌باشند که باعث ایجاد خسارت روی اکثر گونه‌های گیاهی می‌شود. در این تحقیق به بررسی اثر دو عامل آنتاگونیستی Trichoderma  harzianum BI وPseudomonas fluorescens CHA0 در کنترل بیولوژیک نماتد مولد گره ریشه و بررسی تغییرات فعالیت آنزیم پراکسیداز و پلی‌فنل اکسیداز در طی پدیده القای مقاومت پرداخته شد. نتایج نشان داد که استفاده از این قارچ و باکتری به طور تلفیقی موجب کاهش معنی‌دار در فاکتورهای بیماریزایی نماتد نسبت به تیمار باکتری تنها و شاهد (نماتد) گردید. اما این تیمار تلفیقی با تیمار قارچ تنها در کلیه فاکتورها تفاوت معنی‌داری نشان نداد. نتایج بررسی فعالیت آنزیم پراکسیداز در ریشه گیاه در تیمارهای مشابه نشان داد که تغییرات فعالیت این آنزیم از روز اول افزایش نشان داد و در روز چهارم به اوج خود رسید و سرانجام در روزهای بعد فعالیت این آنزیم کاهش پیدا کرد بیشترین فعالیت آنزیم پراکسیداز مربوط به تیمار قارچ +باکتری بود که تفاوت معنی‌داری با فعالیت آنزیم در تیمار باکتری نداشت. همچنین در بررسی فعالیت آنزیم پلی‌فنل اکسیداز مشاهده شد که اوج فعالیت این آنزیم در تیمار قارچ+باکتری طی روز پنجم بعد از مایه‌کوبی نماتد بود که دارای تفاوت معنی‌داری با بقیه تیمارها بود. بنابراین هر دو عامل قادر به القا آنزیم دفاعی پراکسیداز و پلی‌فنل اکسیداز به طور سیستمیک در کل گیاه از جمله ریشه شده و بدین طریق مانع از فعالیت نماتد مولد گره ریشه می‌شود.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Bradford MM (1976) A rapid and sensitive method for the quantification of microgram quantities of protein utilization the principle of protein–dye binding. Analytical Biochemistry 72: 248-254.
Gorlach J, Volrath S, Knoauf-Better G, Hgngy G, Beckhove U, Kogel K, Oostendort M, Staub T, Ward E, Kessmann H, Ryals J (1996) Benzothiadiazole, novel class inducers of systemic acquired resistance, activated gene expression and disease resistance in wheat. Plant Cell 8: 629-643.
 
Hussay RS, Barker KR (1973) Comparison of methods of collecting inoculate of Meloidogyne spp. including a new technique. Plant Disease Reporter 57:1025-1028.
Ibrahim SK (1991) Peroxidase isoenzymes from Meloidogyne spp. cultured of different hosts. Revue de Nématologie 143:335-344
Jepson SB (1987) Identification of Root-Knot Nematodes (Meloidogyne species). Wallingford UK, C.A.B. Interactional. 256pp.
Kosuge T (1969) The role of photonics in host response to infection. Annual Review of Phytopathology 7: 195-222.
Ku HS, Yang SF, Pratt HK (1970) Ethylene production and peroxidase activity during tomato fruit ripening. Plant Cell Physiology (Tokyo) 11: 241-246.
LaemmliUK (1976) Cleavage of structural proteins during the assembly of the bead of bacteriophage. Nature 227: 680-685.
Lyr H (1965) On the toxicity of oxidized polyphones. Journal of Phytopathology 52: 229-240.
Mader M, Fussl R (1982) Role of peroxidase in lignification of tobacco cells. Plant Physiology 70: 1132-1134.
Mahdikhani Moghadam E, Rouhani H, Flahi M (2009) Biological control of sugar beet cyst forming nematode with trichoderma under in vitro and green house condition. Journal of Science and Technology of Agriculture and Natural Resources 13(48): 301-312).
Maleki Ziarati H, Roustaee A, Sahebani N, Etebarian HR, Aminian H (2009) Study of biological control of root-knot nematode, Meloidogyne javanica (Trube) chitwood, in tomato by Trichoderma harzianum Rifai in greenhouse and quantitative changes of phenolic compounds in plant. Seed and Plant Production Journal 25: 259-272. (In Persian).
Meyer SLF, Roberts DP, Chitwood DJ, Carta LK, Lumsden RD, Mao W (2001) Application of Burkholderia cepacia and Trichoderma virens alone and in combination, against M. incognita  on bell pepper. Nematropica 31: 75-86.
Mohammadi M, Kazemi H (2002) Changes in peroxidase and polyphenol oxidase activities in susceptible and resistant wheat heads inoculated with Fusarium graminearum and induced resistance. Plant Science 162: 491-498.
Reuveni R (1995) Biochemical marker for disease resistance, In: Singh RP and Singh US (ed), Molecular Methods in Plant Pathology. CRC Press. Boca Raton. FL. pp. 99-144.
Ritze M, Rudolph K, Schroder I, Hoffmann-Hergarten S, Hallmann J, Sikora RA (2000) Lipopolysaccharides of Rhizobium etli strain G12 act in potato roots as an inducing agent of systemic resistance to infection by the cyst nematode Globodera pallida. Applied and Environmental Microbiology 66: 3515-3518.
Sasser JN (1989) Plant parasitic nematodes: the farmer shidden enemy. A cooperative publication of the department of plant pathology and consortium for International. 115 pp.
Schippers B (1992) Prospects for management of natural suppressiveness to control soil borne pathogens, In: Tjamos EC, Papaviza GC, Cook  RJ (ed.), Biological control of plant diseases. Progress and challenges for the Future Plenum Press, New York, NY, USA. pp. 21-34.
Sharon E, Bar-Eyal M, Chet I, Herrera-Estrella A, Keleifed O, Spiegel Y (2001) Biological control of the root –knot nematode Meloidogyne javanica by Trichoderma harzianum. Phytopathology 91: 687-693.
Siddiqui IA, Ehteshamul-Haque S, Shaukat SS (2001) Use of rhizobacteria in the control of root rot-root knot disease complex of mungbean. Journal of Phytopathology 149: 337-346.
Siddiqui IA, Shaukat SS (2004) Trichoderma harzianum enhances the production of nematicidal compounds in vitro and improves biocontrol of Meloidogyne javanica by Pseudomonas fluorescens in tomato. Letters in Applied Microbiology 38: 169-175.
Siddiqui IA, Shaukat SS (2003) Combination of Pseudomonas aeruginosa and Pochonia chlamydosporia for control of root –infection fungi in tomato .Phytopathology 151: 215-222.
Sikora RA, Hoffmann-Hergarten S (1993) Biological control of plant-parasitic nematodes with plant-health promoting rhizobacteria, in pest management, In: lumsden Redland Vaughn JL(ed), Biologically based technologies, proceeding of Beltsville symposium XVIII, American Chemical Society, Washington. Pp. 166-172.
Thompson DC (1996) Evaluation of bacterial antagonists for reduction of summer pateh symptoms in Kentucky blue grass. Plant Disease 80: 850-862.
Van-Loon L, Bakker PA (2005) Induced systemic resistance as a mechanism of disease suppression by rhizobacteria. PGPR: Biocontrol and Biofertilization 11: 39-66.   
Van-Loon L, Bakker PA, Pieterse CM (1998) Systemic resistance induced by rhizosphere bacteria. Annual Review of Phytopathology 36: 453-483.
Williamson VM, Hussay RS (1996) Nematode pathogenesis and resistance in plant. The Plant Cell 8: 1735-1745.
Windham GL, Windham MT, Williams WP (1989) Effects of Trichoderma spp. on maize growth and Meloidogyne arenaria reproduction. Plant Disease 73: 493-500.
Wojtaszek P (1997) Mechanisms for the generation of reactive oxygen species in plant defense response. Acta Physiologiae Plantarum 19: 581-589.   
Yamasaki H, SakihamaY, Ikehara N (1997) Flavonoid-peroxidase reaction as a detoxification mechanism of plant cells against H2O2. Plant Physiology 115: 1405-1412.
Zacheo G, Oriando C, Bleve T (1993) Characterization of anionic peroxidase in tomato isolines infected by Meloidogyne incognita. Nematology 25: 249-256.