جداسازی و ارزیابی فعالیت آنتاگونیستی یک استرین باکتری و اکتینومیست اپیفیت برعلیه باکتری عامل هسته یخ گیاه پسته

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 گروه بیماری شناسی گیاهی، واحد رفسنجان، دانشگاه آزاداسلامی، رفسنجان، ایران

2 گروه بیماری شناسی گیاهی،دانشکده کشاورزی،دانشگاه آزاد اسلامی واحد رفسنجان ، رفسنجان ،ایران

چکیده

یکی ازعوامل تشدیدکننده در میزان سرمازدگی، وجود باکتری‌ها‎ی عامل هسته‌یخ درسطح گیاهان است.کنترل بیولوژیک باکتری‌های عامل هسته‌یخ توسط آنتاگونیست‌ها، یکی ازگزینه‌های امیدبخش در کاهش این‌نوع سرمازدگی به‌نظر می‌رسد. در این مطالعه فعالیت آنتاگونیستی باکتری‌ها و اکتینومیست‌های اپی‌فیت پسته، با بررسی ممانعت از رشد باکتری عامل هسته‌یخ جداسازی شده ازسطح درختان پسته رفسنجان ( Pseudomonas fragi raf3)، ارزیابی شد. به‌همین منظور نمونه‌هایی از برگ سالم درختان پسته مناطق مختلف شهرستان رفسنجان جمع‌آوری گردید. ازبین باکتری‌ها و اکتینومیست‌های جداسازی‌شده، دو جدایه ( A4 و (B52 که دارای بیشترین هاله بازدارندگی بودند، براساس آزمون‌های بیوشیمیایی و فیزیولوژیکی مورد بررسی قرارگرفتند. نتایج نشان داد که قطر هاله ممانعت از رشد باکتری هسته یخ، روی پتری دیش توسط جدایهA4،20میلی‌متر و در جدایهB52 به میزان 14 میلی‌متر بود. همچنین بررسی خصوصیات مورفولوژیکی و بیوشیمیایی مشخص نمود، جدایه A4 با کلونی‌های سفید‌رنگ و خشک مشابه اکتینومیست‌ها، قادر به تجزیه گلوکز و ساکارز به‌عنوان منبع کربن بوده و همچنین دارای فعالیت لیپازی، پروتئازی و کاتالازی مثبت می‌باشد. این جدایه قادر به رشد در شرایط با اسیدیته 5 و 7 بوده و توان تحمل غلظت های نمککلریدسدیم2، 5، 7و10درصد دارد. همچنین حساس به تتراسایکلین و مقاوم به پنی سیلین بود. جدایه آنتاگونیست دیگر، B52با کلونی‌های زرد رنگ روی محیط آگار مغذی، یک باکتری گرم منفی، کاتالاز مثبت، اکسیداز منفی، دارای تنفس بی‌هوازی اختیاری و قادر به تخمیر لاکتوز بود.

کلیدواژه‌ها


Babu, A. G. C., and Thind, B. S. (2005). Potential use of combinations of Pantoea agglomerans, Pseudomonas flourescenc and Bacillus subtilis as biocontrol agents for the control of bacterial blight of rice. Annals of the Sri Lanka, department of agriculture, 7, 23-37.
Dhingra, O. D. and Sinclair, J. B. (1995). Basic plant pathology methods'. CRC Press: USA, pp: 287- 296, 390- 391.
Doumbou, C. L., Hamby Salove, M. K., Crawford, D. L., and Beaulieu, K. (2002). Actinomycetes, promising tools to control plant diseases and to promote plant growth. Phytoprotection. 82: 85-102.
Fourati-Ben Fguira, L., Fotso, S., Ben Ameur-Mehdi, R., Mellouli, L., and Laatsch, H. (2005). Purification and structure elucidation of antifungal and antibacterial activities of newly isolated Streptomyces sp. strain US80. Research in Microbiology, 156: 341-347.
Gomes, E. D. B., Dias, L. R. L., & Rita de Cassia, M. (2018). Actinomycetes bioactive compounds: Biological control of fungi and phytopathogenic insect. African Journal of Biotechnology, 17(17), 552-559.
Gulve R. M., and Deshmukh, A. M. (2011). Enzymatic activity of actinomycetes isolated from marine sediments. Recent Research in Science and Technology, 3: 80-83.
Gurian Sherman, D and Lindow, S. E. (1993). Bacterial ice nucleation: significance and molecular basis. FASEBJ. 7: 1338-1343
Hirano S.S., and Upper C.D. (2000). Bacteria in the leaf ecosystem with emphasis on Pseudomonas syringae a pathogen, ice nucleus, and epiphyte, Microbiology and Molecular Biology Reviews, 3:624-653.
Ilsan, N. A.,   Nawangsih, A. A., Wahyudi, A. T. (2016). Rice Phyllosphere Actinomycetes as Biocontrol Agent of Bacterial Leaf Blight Disease on Rice. Asian Journal of Plant Pathology. 10(1-2): 1 – 8.
Kohl, J., Kolnaar, R., & Ravensberg, W. J. (2019). Mode of action of microbial biological control agents against plant diseases: relevance beyond efficacy. Frontiers in plant science, 10, 845.
Lahlali, R., Aksissou, W., Lyousfi, N., Ezrari, S., Blenzar, A., Tahiri, A., ... & Amiri, S. (2020). Biocontrol activity and putative mechanism of Bacillus amyloliquefaciens (SF14 and SP10), Alcaligenes faecalis ACBC1, and Pantoea agglomerans ACBP1 against brown rot disease of fruit. Microbial Pathogenesis, 139, 103914
Lukas, M., Schwidetzky, R., Eufemio, R. J., Bonn, M., and Meister, K. (2022). Toward Understanding Bacterial Ice Nucleation. The Journal of Physical Chemistry B, 126, 1861-1867.
Mamphogoro, T. P., Kamutando, C. N., Maboko, M. M., Aiyegoro, O. A., and Babalola, O. O. (2021). Epiphytic bacteria from sweet pepper antagonistic in vitro to Ralstonia solanacearum BD 261, a causative agent of bacterial wilt. Microorganisms9(9), 1947.
Moosavi S.M.A., Dehnad, A., Kamali, S., and Pour-Soltan, M. (2011). Evaluation of antifungal effects and activity of Chitinase 19 from one strain of Iranian native Streptomyces griseus. Journal of Microbial Biotechnology. 3: 1-6 (In Farsi with English abstract)
Nongkhlaw, F. M. W., and Joshi, S. R. (2014). Distribution pattern analysis of epiphytic bacteria on ethno medicinal plant surfaces: A micrographical and molecular approach. Journal of Microscopy and Ultrastructure, 2(1), 34-40.
Nunes, C., Usall, J., Teixidó, N., and Viñas, I. (2001). Biological control of postharvest pear diseases using a bacterium, Pantoea agglomerans CPA-2. International journal of food microbiology, 70 (1-2), 53-61
Olanrewaju, O. S., and Babalola, O. O. (2019). Streptomyces: implications and interactions in plant growth promotion. Applied microbiology and biotechnology, 103(3), 1179-1188.
Passari, A. K., Mishra, V. K., Leo, V. V., Gupta, V. K., & Singh, B. P. (2016). Phytohormone production endowed with antagonistic potential and plant growth promoting abilities of culturable endophytic bacteria isolated from Clerodendrum colebrookianum Walp. Microbiological research193, 57-73.
Promnuan, Y., Promsai, S., & Meelai, S. (2020). Antimicrobial activity of Streptomyces spp. isolated from Apis dorsata combs against some phytopathogenic bacteria. PeerJ, 8, e10512.
Rashard, F. M., Fathy, H. M., El-Zayat, A. S., and Elghonaimy, A. M. (2015). Isolation and characterization of multifunctional Streptomyces species with antimicrobial, nematicidal and phytohormone activities from marine environments in Egypt. Microbiological research, 175, 34-47.
Rostami, M., Hasanzadeh, N., Khodaygan, P., and Riahi-Madvar, A. (2018). Ice nucleation active bacteria from pistachio in Kerman Province, Iran. Journal of Plant Pathology, 100(1), 51-58.
Schaad, N. W., Jones, J. B., & Chun, W. (2001). Laboratory guide for the identification of plant pathogenic bacteria (No. Ed. 3). American Phytopathological Society (APS Press).
Shahidi Bonjar, G. H. and Karimi Nick, A. (2004). Antibacterial activity of some medicinal plants of Iran against Pseudomonas aeruginosa and P. fluorescens. Asian Journal of plant Sciences. 3:61-64.
Shimizu, M., Nakagawa, Y., Sato Y., Furumai, T., Igaroshi, Y., Onaka, H., Yoshida, R., Kunoh, H. (2000). Studies on endophytic Actinomycetes (I) Streptomyces sp. isolated from Rododendron and its antifungal activity. Journal of General Plant Pathology, 66: 360-366
Siddharth, S., & Vittal, R. R. (2019). Isolation, characterization, and structural elucidation of 4-methoxyacetanilide from marine actinobacteria Streptomyces sp. SCA29 and evaluation of its enzyme inhibitory, antibacterial, and cytotoxic potential. Archives of microbiology, 1-10.
Soltani, N. M., Shahidi, B. G., & Khaleghi, N. (2015). Biosynthesis of gold nanoparticles using Streptomyces fulvissimus isolate.
Vergnes, S., Gayrard, D., Veyssière, M., Toulotte, J., Martinez, Y., Dumont, V., ... & Dumas, B. (2020). Phyllosphere colonization by a soil Streptomyces sp. promotes plant defense responses against fungal infection. Molecular Plant-Microbe Interactions, 33(2), 223-234.