پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2017.62272 کنترل بیولوژیک آفات مطالعه امکان‌سنجی مناطق مناسب رهاسازی کفشدوزک شش نقطه‌ای Menochilus sexmaculatus (Fabricius) با تغذیه از شته سبز انار Aphis punicae Pass. با استفاده از GIS در استان یزد فاطمی سعیده السادات دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، گروه گیاه‌پزشکی، دانشگاه ولی عصر رفسنجان سمیع محمد امین استاد، گروه گیاه پزشکی، دانشگاه ولی عصر رفسنجان 22 05 2017 6 1 1 10 13 12 2015 13 09 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2017 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_62272.html

کفشدوزک Menochilus sexmaculatus (Col.: Coccinelidae) یکی از شکارگرهای مهم آفات در باغ­های ایران است. بر اساس نظرات کارشناسان خبره، مطالعات و منابع اطلاعات عواملی مانند درجه حرارت، میزان رطوبت، میزان بارندگی، ارتفاع و میزان تغذیه به‌عنوان مهم‌ترین معیارهای تعیین‌کننده در پهنه­بندی مناطق مناسب برای رهاسازی کفشدوزک شش‎نقطه‌ای درنظر گرفته شده­اند. بر اساس مدل فرایند تحلیل سلسله مراتبیAHPاز نرم‌افزار ArcMap10.1 و 10.1 ArcCatalog  و از زیرنرم­افزارهای Arc GIS برای تشکیل پایگاه داده مکانی و تجزیه وتحلیل­های مربوط به مناطق مناسب رهاسازی کفشدوزک M. sexmaculatus استفاده شد. همچنین از افزونه­های XTools،Hawth's Analysis Tools،ET GeoWizards  نیز برای ورود اطلاعات و داده­ها به نحوه دقیق­تر و مطمئن­تر استفاده شد. نتایج پژوهش حاضر نشان می­دهد که نزدیک به 35 درصد از مناطق استان یزد برای رهاسازی کفشدوزک شش‌نقطه‌ای از نظر پتانسیل درجه حرارت، میزان رطوبت، میزان بارندگی، ارتفاع و میزان تغذیه کاملاً مناسب می‌باشند. دلایل آن می‌تواند قرارگیری این بخش­ها در حد فاصل ارتفاعات و دشت تلقی گردد که موجب تشدید اختلاف فشار و ایجاد جریان­های هوایی از کوه به دشت و برعکس می‌شود. همچنین نزدیک به 60 درصد از مناطق استان کاملاً نامناسب برای رهاسازی کفشدوزک شناخته شدند که از دلایل آن می‌توان به درجه حرارت بسیار بالا و نبودن تغذیه کافی اشاره نمود.

 آفات انار زیست‌شناسی سیستم اطلاعات جغرافیایی کفشدوزک زیگزاگی Aboi Ashkezari A, Fatemi Dehaj SS, Samih MA, Ramezani I (2013a) Distribution of greenhouse cucumber root knot nematode Meloidogyne javanica in Yazd using GIS and its impact on the consumption of calcium fertilizers. The sixth congress of the Agricultural Research Findings, 15-16 May, the University of Kurdistan, Iran. 172-177. (in Persian) Aboi Ashkezari A, Fatemi Dehaj SS, Samih MA, Ramezani I (2013b) Use nearest neighbor method and the K Rayply the distribution pattern spider mite Tetranychus urticaein greenhouse cucumber. The sixth congress of the agricultural research findings, 15-16 May, the University of Kurdistan, Iran. 178-186. (in Persian) Agarwala BK, Yasuda H (2000) Competitive ability of ladybird predators of aphids a review of Cheilomenes sexmaculata Fabricus (Col.: Coccinellidae) with a wordwide checklist of preys. Journal of the Aphidology 14: 1-20. Bennui A, Pattanamanee P, Puetpaiboon U, Phukpattaranon P, Chetpattananondh K (2007)Site selection for large wind turbine using GIS. PSU-UNS International Conference on Engineering and Enviroment. 10-11 May. Prince of Songkla University, Faculty of EngineeringHat Yai, Songkhla, Thailand. 561-566. Çimren E, Çatay B, Budak E (2007) Development of a machine tool selection system using AHP. International Journal of Advanced Manufacturing Technology 35: 363-376. Fatemi Ss, Samih MA (2015) Effect of temperature on some biological parameters of Menochilus sexmaculatus (Fabricius) by feeding on pomegranate green aphid, Aphis punicae Pass. Journal of Applied Research in Plant Protection 4(1): 67-81 Harmon JE, Anderson SJ (2003) The design and implementation of geographic information systems. 272 PP. Hill MJ, Braaten R (2005) Multi-criteria decision analysis in spatial decision support: the ASSESS analytic hierarchy process and the role of quantitative methods and spatially explicit analysis. Environmental Modeling and Software 20: 955-976. Huxhold WE (1991) An introduction to urban geographic information systems New York, Oxford University Press. Iperti G (1978) Coincidence spatial des coccinellid et des puceron. Annales de Zoologie Ecologie Animale 10: 373-75. Kouki J, Niemela P, Viitasaari M (1994) Reversed latitudinal gradient in species richness of sawflies (Hym: Symphyta). Annali Zoologici Fennici 31: 83-88 Lashkari M, Sahragard A, Manzari Sh, Hosseini R, Erfanfar D (2013) Niche modeling of Asian citrus psyllid, Diaphorina citri Kuwayama (Hem.: Psyllidae). Plant Pests Research 3 (1) : 45-58. (in Persian) Latifian M, SoleymanNejadian E (2009)Study of the Lesser moth Batrachedra amydraula (Lep.: Batrachedridae) distribution based on geostatistical models in Khuzestan province. Journal of Entomological Research 1(1): 43-55 Omkarprasad V, Sushil K (2004) Analytic hierarchy process: An overview of applications, European Journal of Operational Research 169: 1-29 Oppenheim N (1980) Applied models in urban and regional problems analysis. Prentice-Hall, Political Science, 356 pages. (Translate: Tabibian M (2000) Tehran University.) Maisin, N. (1997) Reproductive morphology and behaviour of Menochilus sexmaculatus Fabricius. (Col.: Coccinellidae) Master of Science Thesis. Department of Biology. University of Putra Malaysia. Mofidi-Neyestanak M, Karimzadeh J, Taghizadeh M, Askari-Seyahooei M (2012) A preliminary study on the biodiversity of Acridinae (Orthoptera) in Ardebil and Hormozgan provinces, Iran. 20th Iranian Plant Protection Congress, 25–28 August. 229. Pahnai L (2013) Using Geographic Information System (GIS) to study the spatial distribution of eggs and larvae Lobesia botranain the city-province of East Azerbaijan Horand. M. Sc., Department of plant protection, College of Agriculture, Maraghe, Iran. (in Persian) Parhizkar A, Ghaffari Gilan Deh A (2006) Multi-criteria decision analysis and geographic information, Publication of the study, designing books Humanities University (samt). 597. (in Persian) Pedigo LP (1999) Entomology and pest management. Prentice Hall. USA,691. Raj BT (1991) Seasonal abundance of natural enemies of aphids infesting potato crop. Journal of Aphidology 3: 157-161. Rezvani A (2004) Aphids of trees and shrubs of Iran. Plant Pests and Diseases Research Institutepp, 270. (in Persian) Saaty TL  (1997) That is not the analytic hierarchy process: What the AHP is and what it is not., Journal of Multicriteria Decision Analysis. 6: 324-335. Shakeri M, Daneshvar M (2004)Conference report on the achievements and problems of management Carob, Ectomyelois ceratoniae.Research Center for Agriculture and Natural Resources of Yazd, p. 13. (in Persian) Zare Khormizi M (2011) study the faunistic of lady beetles (Coleoptera, Coccinellidae) was studied in Mehriz region (Yazd province). M. Sc., Department of Entomology, Fars Science and Research Branch, Islamic Azad University, Fars Province. (in Persian)_||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2017.217827.172 کنترل بیولوژیک بیمایهای گیاهی بررسی دخالت در تنظیم ژنی وابسته به حدنصاب احساس در Pectobacterium atrosepticum و تغییر فعالیت LuxI و LuxR توسط ریزوباکتری‎های تجزیه‎کننده ان-اسیل‌هموسرین‌لاکتون سبحانی پور عادله استادیار، گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد دامغان بهبودی کیوان دانشیار، گروه گیاهپزشکی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج محمودی اسماعیل استادیار، گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد اصفهان و قطب علمی ترانسژنز، دانشگاه آزاد اسلامی واحد اصفهان (خوراسگان)، اصفهان 22 05 2017 6 1 11 21 06 11 2016 30 01 2017 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2017 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_62730.html

سیستم حدنصاب احساس (Quorum sensing) یک سیستم ارتباطی است که به باکتری­ها اجازه می­دهد تا تراکم جمعیتشان را از طریق تولید و ردیابی مولکول­های پیام­رسان بسنجند. در باکتری­های گرم منفی این مولکول­ها شامل ان-­اسیل­هموسرین­لاکتون­ها (AHLs) است که توسط پروتئین‌های سازنده (LuxI) ساخته می­شود و سپس به بیرون از سلول ترشح شده و به پروتئین­های گیرنده (LuxR) در باکتری‌های مجاور متصل می­شوند و رونویسی از ژن­های هدف را کم یا زیاد می­کنند. تأثیر 66 ریزوباکتری تجزیه­کننده AHL بر تغییر فعالیت و کارایی LuxI/LuxR و یا بازداری از سنتز AHL با استفاده از سیستم انتشار در آگار و Chromobacterium violaceum CV026 به­عنوان گزارشگر مورد ارزیابی قرار گرفت. جدایه Pectobacterium atrosepticum SRI1043 نیز به­عنوان مولد AHL استفاده شد. برای بررسی توانایی بازدارندگی از فعالیت LuxI، جدایه مولد AHL در نزدیکی باکتری­های خاموش­کننده و باکتری گزارشگر دورتر از آن قرار گرفت. برای بررسی بازداری از فعالیت LuxR، جای استرین­های مولد AHL و گزارشگر عوض شد. هر دو خاصیت ممانعت از فعالیت LuxI و LuxR در 21 جدایه مشاهده شد. این جدایه­ها بر اساس تست­های بیوشیمیایی و بررسی توالی 16srDNA در جنس­های Bacillus، Brevundimonas، Citrobacter، Bordetella، Acinetobacter، Stenotrophomonas، Pseudomonas و Escherchia قرار گرفتند. برای بررسی دخالت در تنظیم ژنی وابسته به AHL در P. atrosepticum، باکتری­های آنتاگونیست با فاصله کمی از بیمارگر کشت شد و کاهش تولید آنزیم پروتئاز با مشاهده کاهش هاله شفاف اطراف این بیمارگر روی محیط کشت شیر خشک بدون چربی-آگار (SMA) مشخص شد. پنج جدایه­ تا حد زیادی تولید پروتئاز را کاهش دادند.

 AHL CV026 حدنصاب احساس Amaral L, Molnar J (2012) Inhibitors of efflux pumps of Gram-negative bacteria inhibit Quorum Sensing. Open Journal of Pharmacology 2 (2): 1-14. Antunes LCM, Ferreira RBR, Buckner MMC, Finlay BB (2010) Quorum sensing in bacterial virulence. Microbiology 156: 2271-2282. Barnard AM, Salmond GP (2007) Quorum sensing in Erwinia species. Analytical and Bioanalytical Chemistry 387: 415-423. Bassler BL, Losick R (2006) Bacterially speaking. Cell Journal 125: 237-246. Cirou A, Raffoux A, Diallo S, Latour X, Dessaux Y, Faure D (2011) Gamma-caprolactone stimulates growth of quorum-quenching Rhodococcus populations in a large scale hydroponic system for culturing Solanum tuberosom. Research in Microbiology 162: 945-950. Czajkowski R, Jafra S (2009) Quenching of acyl-homoserine lactone-dependent quorum sensing by enzymatic disruption of signal molecules. Acta Biochimica Polonica 56(1): 1-16. Czajkowski R, Perombelon MCM, van Veen JA, van der Wolf JM (2011) Control of blackleg and tuber soft rot of potato caused by Pectobacterium and Dickeya species. A review Plant Pathology 60(6): 999-1013. Chen F, Gao Y, Chen X, Yu  Z,  Li X (2013) Quorum Quenching Enzymes and Their Application in Degrading Signal Molecules to Block Quorum Sensing-Dependent Infection. International Journal of Molecular Sciences 14: 17477-17500 Chenia HY (2013) Anti-Quorum Sensing Potential of Crude Kigelia Africana Fruit Extracts. Sensors 13: 2802-2817. Dong YH, Xu JL, Li XZ, Zhang LH (2000) AiiA, an enzyme that inactivares the acylhomocerine lactone quorum-sensing signal and attenuates the virulence of Erwinia carotovora. Proceeding of the National Academy of Science USA 97: 3526-3531. Dong YH, Gusti AR, Zhang Q, Xu JL, Zhang LH (2002) Identification of quorum-quenching N-acyl homoserine lactonases from  Bacillus species. Applied Environal Microbiology 68: 1754-1759. Edwards U, Rogall T, Blocker H, Bottger EC (1989) Isolation and direct complete nucleotide determination of entire genes. Characterization of a gene coding for 16S ribosomal RNA. Nucleic Acids Research 17(19): 7843-7853. Galloway WRJD, Hodgkinson TJ, Bowden S, Welch M, Spring DR (2012) Applications of small molecule .activators and inhibitors of quorum sensing in Gram-negative bacteria. Trends in Microbiology 20(9): 449-458. Higgins CA, Bell T, Delbederi Z, Feutren-Burton S, McClean B, O’Dowd C, Watters W, Armstrong P, Waugh D, van den Berg H (2010) Growth inhibitory activity of extracted material and isolated compounds from the fruits of Kigelia pinnata. Planta Medica journal76: 1840-1846. Hong KW (2012) Quorum quenching revisited-from signal decays to signalling confusion. Sensors 12: 4661-4696. Hugouvieux-Cotte-Pattat  N, Condemine G, Nasser W, Reverchon S (1996) Regulation of pectinolysis in Erwinia chrysanthemi. Annual Review of Microbiology 50: 213-257. Krzyanowska  D M, Potrykus  M, Golanowska  M, Polonis K, Gwizdek-Wisniewska A, Lojkowska E, Jafra S (2012) Rhizosphere Bacteria as Potential Biocontrol Agents Against Soft Rot Caused by Various Pectobacterium and Dickeya spp. Strains. Journal of Plant Pathology 94(2): 367-378. Liu H, Coulthurst SJ, Pritchard L, Hedley PE, Ravensdale M, Humphris S, Burr T, Takle G, Brurberg MB, Birch PRJ, Salmond GPC, Toth IK (2008) Quorum sensing coordinates brute force and stealth modes of infection in the plant pathogen Pectobacterium atrosepticum. PLoS Pathogen. DOI: 10.1371/journal.ppat.1000093. Ma A, Lv D, Zhuang X, Zhuang G (2013) Quorum quenching in culturable phyllosphere bacteria from Tobacco. International Journal of Molecular Science 14: 14697-14619. Mahmoudi  E, Ahamadi A, Seyed-Tabatabaei BE, Ghobadi A, Akhavan Hassanzadeh N, Venturi V (2011) An Novel AHL-Degrading Rhizobcterium Quenches The Virulence Of Pectobacterium atrosepticum On Potato Plant. Journal of Plant Pathology 93(3): 587-594. Martins ML, Souza VN, Moraes JRE, Moraes FR, Costa AJ (1999) Comparative evaluation of the susceptibility of cultivated fishes to the natural infection with Myxosporean parasites and tissue changes in the host. Brazilian Journal of Biology 59: 263-269. McClean KH, Winson MK, Fish L, Taylor A, Chhabra SR, Camara M, Daykin M, Lamb JH, Swift S, Bycrof BW, Stewart GS, Williams P (1997) Quorum sensing and Chromobacterium violaceum: exploitation of violacein production and inhibition for the detection of N-acylhomoserine lactones, Microbiology 143: 3703-3711. Mihalik K, Chung DW, Crixell SH, McLean RJC, Vattem DA (2008) Quorum sensing modulators of Pseudomonas aeruginosa characterized in Camellia sinensis. Asian Journal of Traditional Medicines 3: 12-23. Molina L, Constantinescu F, Michel L, Reimmann C, Duffy B, Défago G (2003) Degradation of pathogen quorum sensing molecules by soil bacteria: a preventive and curative biological control mechanism. FEMS Microbiology Letters 45: 71-81. Morohoshi T, Someya N, Ikeda T (2009) Novel N-Acylhomoserin lactone- degrading bacteria isolate from the leaf surface of Solanum tuberosum and their quorum quenching properties. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry 73: 2124-2127. Packiavathy IASV, Palani Agilandeswari, Khadar SM, Pandian SK, Ravi AV (2012) Antibiofilm and quorum sensing inhibitory potential of Cuminum cyminum and its secondary metabolite methyl eugenol against Gram negative bacterial pathogens. Food Research International 45: 85-92. Park SJ, Park SY, Ryu CM, Park SH, Lee JK (2008) The Role of AiiA, a Quorum-Quenching Enzyme from Bacillus thuringiensis, on the Rhizosphere Competence. Journal of Microbiology and Biotechnology 18(9): 1518-1521. Rasmussen TB, Skindersoe ME, Bjarnsholt T, Phipps RK, Christensen KB, Jensen PO (2005) Identity and effects of quorum-sensing inhibitors produced by Penicillium species. Microbiology 151: 1325-40. Rasmussen TB, Givskov M (2006) Quorum-sensing inhibitors as anti-pathogenic drugs. International Journal of Medical Microbiology 296: 149-161. Schaad NW, Jones JB, Chun W (2001) Laboratory guide for identification of plant pathogenic bacteria. 3ed,  the American Phytopathological Society, USA. Qian GL, Fan JQ, Chen DF, Kang YJ, Han B, Hu BS, Liu FQ (2010) Reducing Pectobacterium virulence by expression of an N-acyl homoserine lactonase gene Plpp-aiiA in Lysobacter enzymogenes strain OH11. Biological Control 52: 17-23. Van der Wolf JM, De Boer SH (2007) Bacterial pathogens of potato. In: Vreugdenhil D, ed Potato Biology and Biotechnology: Advances and Perspective. Delft, The Wetherlands: Elsevier, 595-617. Vattem DA, Mihalik K, Crixell SH, McLean RJC (2007) Dietary phytochemicals as quorum sensing inhibitors. Fitoterapia78: 302-310. Von Bodman SB, Bauer WD, Coplin DL (2003) Quorum sensing in plant-pathogenic bacteria. Annual Review of Phytopathology 41: 455-482. Yates EA, Philipp B, Buckley C, Atkinson S, Chhabra SR, Sockett RE, Goldner M, Dessaux Y, Camara M, Smith H, Williams P (2002) N-Acylhomoserine lactones undergo lactonolysis in a pH-, temperature-, and acyl chain length-dependent manner during growth of Yersinia pseudotuberculosis and Pseudomonas aeruginosa. Infection and Immunity 70: 5635-5646. Zamani M, Behboudi K, Ahmadzadeh M (2013) Quorum quenching by Bacillus cereus U29: a double-edged sword in biological control of plant diseases. Biocontrol Science and Technology 23(5): 555-573._||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2017.62731 کنترل بیولوژیک بیمایهای گیاهی شناسایی عوامل قارچی مولد لکه‌برگی گوجه‌فرنگی و کنترل بیولوژیکی آنها توسط آنتاگونیست‌های ناحیه ریزوسفر گوجه‌فرنگی در منطقه سیستان بیدقی محمد دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، بیماری‌شناسی گیاهی، دانشکده کشاورزی دانشگاه زابل پنجه که ناصر دانشیار بیماری‌شناسی گیاهی، دانشکده کشاورزی دانشگاه زابل رضایی راضیه دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، بیماری‌شناسی گیاهی، دانشکده کشاورزی دانشگاه زابل 22 05 2017 6 1 23 39 29 06 2015 04 09 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2017 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_62731.html

به منظور شناسایی و کنترل بیولوژیک عوامل قارچی مولد لکه برگی گوجه‌فرنگی در منطقه سیستان، طی سال­های ۹۳-۹۲ از مزارع و گلخانه­های مختلف نمونه‌برداری به‌عمل آمد. جداسازی و تشخیص گونه‌ها با استفاده از روش­های استاندارد در آزمایشگاه انجام گرفت. در مجموع ۱۰۲ جدایه قارچی به‌دست آمد که بر اساس خصوصیات ریخت­شناسی در شش گونه Alternaria alternata، A. dumosa، A. tenuissima، A. mimicula، A. tomaticolaوCladosporium cladosporiodes قرار گرفتند. همه قارچ‌های جداسازی شده روی گوجه‌فرنگی بیماریزا بودند. در این پژوهش گونه C. cladosporiodes به‌عنوان عامل بیماری روی گوجه­فرنگی برای اولین بار از ایران گزارش می­شود. به منظور کنترل بیولوژیک بیمارگر­ها از مجموع ۲۲۰ جدایه قارچی و باکتریایی جدا شده از ریزوسفر گوجه­فرنگی، ۱۰ جدایه به روش کشت متقابل توانایی آنتاگونیستی بالایی در برابر قارچ‌های بیمارگر از خود نشان دادند. این جدایه­ها شامل Trichoderma harzianum، T. virensو B. subtilisبودند. در بررسی­های آزمایشگاهی مشخص شد که T. harzianum، T. virens، BS1 و BS2 دارای اثرات آنتاگونیستی بالاتری بودند که بیشترین اثر بازدارندگی روی A. alternata به‌ترتیب ۶۷/۵۵، ۸۳/۵۲، ۷۱/۵۸ و ۵۷/۵۸ درصد داشتند. به همین دلیل این جدایه­ها جهت آزمایش­های بیوکنترلی در شرایط گلخانه انتخاب گردیدند. بر اساس نتایج آزمایش­های گلخانه­ای، جدایه­های آنتاگونیست باعث کاهش شدت بیماریزایی و بهبود عملکرد صفات زراعی شدند. در این میان از قارچ‌های آنتاگونیست گونه T. harzianum و از جدایه‌های باکتریایی، جدایه BS1 عملکرد بهتری را نشان داده بودند.

 آنتاگونیست بیوکنترل لکه برگی گوجه‌فرنگی Trichoderma Bacillus Agrios GN (2005) Plant Pathology. 5th Ed, New York: Elsevier Academic Press. pp. 237-242. Alwathnani AH, Perveen k (2012) Biological control of Fusarium wilt of tomato by antagonist fungi and cyanobacteria. African Journal of Biotechnology 11(5): 1100-1105. Baker R, Elad Y, Chet I (1984) The controlled experiment in the scientific methods with emphasis on biological control. Phytopathology 74(9): 1019- 1021. Bashar MA, Rai B (1994) Antagonistic potential of root region microflora of chickpea against Fusarium oxysporum f.sp. ciceri. Bangladesh Journal Botany 23: 13-19. Benitez T, Carmen Limon M, Codon AC, Rincon AM (2004) Biocontrol mechanisms of Trichoderma strains. International Journal of Microbiology 7: 249-260. Bissett J (1991) Arevision of the genus Trichoderma. II infragenic classification, Canadian Journal of Botany 69: 2357-2372. Burmeister L (2008) The antagonistic mechanisms employed by Trichoderma harzianum and their impact on the control of the bean rust fungus Uromyces appendiculatus. PhD thesis, Leibniz Universita¨t Hannover. Cardona R, Rodriguez H (2006) Effects of Trichoderma harzianum fungus on the incidence of the charcoal rot disease on sesame. Revista de la Facultad de Agronomia 23: 42-47. Change Y, Baker C, Klifeld R, Chet I (1986) Increased growth of plants in the presense of the biological control agent Trichoderma harzianum. Plant Disease 70: 145-148. Chen Y, Yan F, Chai Y, Liu H, Kolter R, Losick R, Guo JH (2013) Biocontrol of tomato with disease by Bacillus subtilis isolates from natural environments depends on conserved genes mediating biofilm formation. Environ Microbiology 15(3): 848-864. Davet P (1979) Technique pour lanalyse des population de Trichoderma et de Gliocladium virens dans le sol. Annuals Phytopathology 11: 529-533. De Vos P, Garrity GM, Jones D, Krieg NR, Ludwig W, Rainey FA, Schleifer K, Whitman WB (2009) Bergey,s manual of systematic bacteriology. 3rd Ed., Springer, 1422p. Dennis C, Webester j (1971) Antagonist properties of species group of Trichoderma 111. Hyphal interaction. Transaction of the British Mycological Society 57: 363-369. Emmert EAB, Handelsman J (1999) Biocontrol of plant disease. a (Gram-) positive perspective. Fems Microbiology Letters 171: 1-9. Ershad J (2009) Fungi of  Iran. Third edition, Iranian Research Institute of Plant Protection Publishers. PP. 326-342. (in Persian) Fahy PC, Persley GJ (1983) Plant Bacteria Diseases: A Diagnostic Guide. Australia: Academic Press, 392 P. Fravel DR (2005) Commercialization and implementation of biocontrol. Phytopathology 43:337–59. Garampalli RH, Ravikumar MC (2013) Antifungal activity of plants extracts against Alternaria solani, the causal agent of early blight of tomato. Archives of  Phytopathology and Plant Protection 46 (16): 1897-1903. George B, Kaura C, Khurdiya DS,  Kapoor HC (2004) Antioxidants in tomato (Lycopersium esculentum) as a function of genotype. Foodchemistry 84: 45-51. Gharaei Z, Roustaei A, Etebarian HR (2007) Evaluation of biological control of charcoal rot melons Tassi (Goid) Macrophomina phaseolina by isolates of Bacillus, 2nd National Congress of Ecological Agriculture 1847-1872. (In Persian). Ghasemi S, Ahmadzade M, Torabi S (2013) Biological control of tomato rot by strains of Pseudomonas fluorescens UTPF68  and B. subtilis UTB96. Iranian Journal of Plant Protection Science 44 (2): 299-305. (In Persian). Gholi Zade H, Ebad Zade H, Hatami F, Hossin Poor R, Mohiti Z, Rezaei MM, Fazli B, Rafei M (2011) Agricultural statistics. http://amar.maj.ir. (in Persian) Ghoosta Y, Ershad J, Zare R, mohammadigoltapeh A (2003) taxonomic study Alternaria species in Iran. Rostaniha (4): 21. (in Persian) Hajipour Jarchlou Z, Ghoost Y, Rezaei S (2012) Study of Alternaria species of tomato and potato disease in West Azerbaijan province. Iranian Journal Of Plant Protection Science. 44 (1): 155-163. (in Persian) Hoffman DD, Diers BW, Hartman GL, Nickell CD, Nelson RL, Pedersen WL, Cober ER, Graef GL, Steadman JR, Grau CR, Nelson BD, del Rio LE, Helms T, Anderson T, Poysa V, Rajcan I,  Stienstra WC (2002) Selected soybean plant introductions with partial resistance to Sclerotinia sclerotiorum. Plant Disese 86: 971-980. Howell CR (2003) Mechanisms employed by Trichoderma species in the biological control of Plant diseases. Plant Disease 87(1): 4 -10. Idnurm A,  Howlett BJ (2001) Pathogenicity genes of phytopathogenic fungi. Molecular Plant Pathology 2(4): 241-255. Imtiaj A, Lee T (2008) Antagonistic effect of three Trichoderma species on the Alternaria porri pathogen of onion blotch. World Journal Agricalture Science 4: 13-17. Karthikeyan M, Radhika K, Bhaskaran R, Mathiyazhagan S, Sandosskumar R, Velazhahan R, Alice D (2008) Biological control of onion leaf blight disease by bulb and foliar application of powder formulation of antagonist mixture. Archives Phytopathology and Plant Protection 41(6): 407-417. Kleifeld O, Chet I (1992) Trichoderma harzianum – interaction with plants and effect on growth response. Plant Soil 14(4): 267-272. Mathur K, Shekhawat KS (1986) Chemical control of early blight in kharif sown tomato.  Indian Journal of  Mycology and Plant Pathology 16(2): 235-236. Michael A, Nelson PE (1972) Antagonistic effect of bacteria on Fusarium roseum "culmorum" from carnation. Phytopathology 62: 1052-1056. Mokhtar H, Dehimat A (2012) Antagonism capability in vitro of Trichoderma harzianum against some pathogenic fungi. Agriculture and Biology Journal of North American3(11):452-460. Nicknejad Kazempour M, Sharifi Tehrani A, okhowah M (1999) Effect of antagonist fungi Trichoderma spp. against Fusarium wilt disease caused by Fusarium oxysporum f.sp. tomatoes lycopersici under greenhouse. Journal of Agricultural Science and Technology 2(3): 31-37. (in Persian) Ogorek R, Lejman A, Pusz W, Mituch A, Miodynska P (2012) Characteristics and taxonomy of Cladosporium fungi. Mikologia Lekarska 19(2): 80-85. Ongena M, Jacques P (2008) Bacillus lipopeptides: versatile weapons for plant disease biocontrol. Trends In Microbiology 16(3): 115-125. Pandey A (2010) Antagonism of Two Trichoderma Species against Alternaria alternata on Capsicum frutescens. Journal of Experimental Sciences 5(1): 18-19. Prakasam V, Sharma P (2012) Trichoderma harzianum (Th-3) a potential strain to manage the purple blotch of onion (Allium cepa L.) caused by Alternaria porri under north Indian plains. Journal of Agriculture Science 4(10): 266-272.  Rivas S, Thomas CM (2005) Molecular interactions between tomato and the leaf mold pathogen Cladosporium fulvum. Annual Review of Phytopathology 43: 395-436. Romero D, Cazorla FM, Perez-Garcia A, De Vicente A, Bloemberg G (2007) Isolation and characterization of antagonistic Bacillus subtilis strains from the avocado rhizoplane displaying biocontrol activity. Journal of Applied Microbiology 5(103): 1950- 1959.   Sabaratnam S, Traquair J (2002) Formulation of a Streptomyces biocontrol agent for the suppression of Rhizoctonia damping-off in tomato transplants. Biological control 23(3): 245-253. Schaad NW, Jones JB, Chum W (2001) Laboratory guide for identification of plant pathogenic bacteria, 3rd edn. APS, St. Paul, Minn. Shahnaz E, Razdan V, Rezwi S, Rather T, Gupta S, Andrabi M (2012) Integrated disease management of foliar blight disease of onion: a case study of application of confounded factorials. Journal of Agriculture Science 5(1): 17-22.  Simmons EG (2007) Alternaria: an identification manual. The American Phytopathological Society.pp. 500-510. Vries GA (1952) Contribution to the knowledge of the genus Cladosporium. Link ex Fr. CBS, Baarn. Weller DM (1988) Biological control of soilborne plant pathogens in the rhizospher with bacteria. Annual Review of Phytopathology 26: 379-407. Xu LH, Xie GL, Li B, Zhu B (2008) First report of pear blossom blast caused by Pseudomonas syringae pv. syringae in china. Plant Disease 92(5): 832- 833._||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2017.62736 کنترل بیولوژیک بیمایهای گیاهی کاربرد قارچ Glomus mosseae و بقایای سبز کلم قمری در کنترل نماتد Meloidogyne javanica روی گوجه‌فرنگی اعظمی ذبیح اله استادیار، دانشکده کشاورزی، دانشگاه جیرفت نصیرپور راضیه دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، دانشکده کشاورزی، دانشگاه جیرفت فکرت فرناز مربی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه جیرفت علیزاده حمید رضا استادیار، دانشکده کشاورزی، دانشگاه جیرفت 22 05 2017 6 1 41 51 12 06 2016 09 11 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2017 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_62736.html

نماتدهای ریشه گرهی از نظر اقتصادی از بیمارگرهای مهم گیاهی در جهان محسوب می‌شوند. استفاده از عوامل کنترل زیستی معمولاً با ثبات‌تر و امن برای محیط زیست هستند. در این پژوهش اثر قارچ Glomus mosseae (Gm) و بقایای کلم قمری (Brassica oleracea) و ترکیب آنها روی کنترل نماتد مولد ریشه گرهی گوجه‌فرنگی Meloidogyne javanica در شرایط گلخانه‌ای مورد مطالعه قرار گرفت. به منظور ترکیب تیمارها، نشاهای گوجه‌فرنگی کلنیزه شده توسط قارچ ریشه به گلدان­های حاوی بقایای کلم قمری در مقادیر نیم و یک درصد منتقل گردید و تلقیح و آلوده‌سازی تمامی تیمارها با نماتد بعد از یک هفته انجام شد. نتایج نشان داد که کاربرد ترکیب قارچ ریشه Gm + 1% کلم، به‌طور معنی‌داری (05/0P<) باعث افزایش شاخص‌های رشدی گیاه  و کاهش زادولد نماتد (با مقدار لگاریتم 95/4) شد. مقایسه کاربرد هر یک از این عوامل به تنهایی در کنترل نماتد ریشه گرهی نشان داد که عملکرد بقایای کلم بهتر از قارچ Gm بوده و شاخص‌های رشدی را افزایش داده است. در مجموع می‌توان تولید نشا‌هایی همراه با ریشه کلنیزه شده با G. mosseae و نیز اصلاح خاک با بقایای کلم، جهت کنترل این نماتد به منظور کاهش کود و سموم شیمیایی در کشاورزی پایدار را پیشنهاد کرد.

 قارچ میکوریز کلم مدیریت نماتد مولد گره ریشه Akhtar M, Alam MM (1993) Utilization of waste materials in nematode control: a review. Bioresource Technology 45(1): 1-7. Allen MF, Moore Jr TS, Christensen M (1980) Phytohormone changes in Bouteloua gracilis infected by vesicular-arbuscular mycorrhizae: I. Cytokinin increases in the host plant. Canadian Journal of Botany 58: 371-374. Allen MF, Moore Jr TS, Christensen M (1982) Phytohormone changes in Bouteloua gracilis infected by vesicular-arbuscular mycorrhizae. II. Altered levels of gibberellin-like substances and abscisic acid in the host plant. Canadian Journal of Botany 60: 468-471. Baby UI, Manibhushanrao K (1996) Fungal antagonists and VA mycorrhizal fungi for biocontrol of Rhizoctonia solani, the rice sheath blight pathogen, pp 1-9. In Recent Developments in Biocontrol of Plant Pathogens. Eds. Manibhushanrao K Mahadevan A. Today and Tomorrow's Printers and Publishers, New Delhi, pp. 160. Behnamiyan M, Hassanpour M, Dajestan S (2015) Tomato. Ayege Publication, Tabriz, Iran. PP. 232. (in Persian) Björkman M, Klingen I, Birch AN,  Bones AM, Bruce TJ, Johansen TJ, Meadow R, Mølmann J, Seljasen R, Smart LE (2011). Phytochemicals of Brassicaceae in plant protection and human health–Influences of climate, environment and agronomic practice. Phytochemistry72: 538-556. Bybd Jr D, Kirkpatrick T, Barker K (1983) An improved technique for clearing and staining plant tissues for detection of nematodes. Journal of Nematology 15(1): 14-143. Daft MJ, Okusanya BO (1973) Effect of endogen mycorrhizal on plant growth. VI. Influence of infection on the anatomy and reproductive development in four hosts. NewPhytologyst 72: 1333-1339 Dalpé Y) 1993( Vesicular-arbuscular mycorrhiz, In: Soil sampling and methods of analysis. M. R. Carter, Ed., pp. 287–301, CRC Press, Boca Raton, Fla, USA, 3rd edition. Darekar K, Mhase N (1988) Assessment of yield losses due to root-knot nematode Meloidogyne incognita race 3 in tomato, brinjal and bittergourd. Internationa Nematology Network Newsletter 5(4): 7-9. Diedhiou P J,  Hallmann E.-C, Oerke, H. W. Dehne HW (2003) Effects of arbuscular mycorrhizal fungi and a non-pathogenic Fusarium oxysporum on Meloidogyne incognita infestation of tomato. Mycorrhiza 13(4): 199-204. Elsen A, Baimey H, Swennen, Waele Dde R (2003) Relative mycorrhizal dependency and mycorrhiza-nematode interaction in banana cultivars (Musa spp.) differing in nematode  susceptibility. Plant and Soil 256(2): 303-313. Gaur A, Adholeya A (2004) Prospects of arbuscular mycorrhizal fungi in phytoremediation of heavy metal contaminated soils. Current Science 86: 528-534. Giovannetti M, Mosse B (1980) An evaluation of techniques for measuring vesicular arbuscular mycorrhizal infection in roots. New Phytologyst 84: 489-500. Gomez KA, Gomez AA (1984) Statistical procedures for agricultural research, 2nd edn. An international rice research institute book. Wiley, New York, pp. 704. Harrier LA, Watson CA (2004) The potential role of arbuscular mycorrhizal (AM) fungi in the bioprotection of plants against soil-borne pathogens in organic and/or other sustainable farming systems. Pest Management Science 60: 149-57. Hayman DS )1982( The physiology of vesicular arbuscular endo-mycorrhizal symbiosis. Canadian Journal of Botany 61: 944-963. Hol, WHG, Cook R (2005) An overview of arbuscular mycorrhizal fungi-nematode interactions. Basic and Applied Ecology, 6(6): 489-503. Hussey R, Barker K (1973) Comparison of methods of collecting inocula of Meloidogyne spp. including a new technique. Plant Disease Reporte 57: 1025-1028. Hussey R, Roncadorl R (1982) Vesicular-arbuscular mycorrhizae may limit nematode activity and improve plant growth.Plant Disease 66: 9-14. Janisiewicz WJ, Bors B (1995) Development of a microbial community of bacterial and yeast antagonists to control wound invading postharvest pathogens of fruits. Applied and Environmental Microbiology 61:3261–3267. Jepson SB (1987) Identification of root-knot nematodes (Meloidogyne species). Common wealth Agricultural Bureau, Farnham Royal, UK, pp. 265. Joner EJ, Jakobsen I (1992) Enhanced growth of external VA mycorrhizal hyphae in soil amended with Straw. In: Mycorrhizas in ecosystems. Eds.  Read Lewis DJ, Fitter DH, Alexander AHIJ, CAB International, UK., pp. 387. Kellam M, Schenck N (1980) Interaction between a vesicular-arbuscular mycorrhizal fungus and root-knot nematode on soybean.Phytopathology70: 293-296. Kormanik PP, Mac-Graw AC (1982) Quantification of vesicular arbuscular mycorrhizae in plant roots. In Methods and principles of mycorrhizal research. Ed. Schenk NC. pp. 37-45.The American Phytopathology Society, St. Paul, Minn. Kwerepe BC, Labuschagne N (2003) Biofumigation and soil solarization as integrated pest management (IPM) components for the control of root-knot nematode, Meloidogyne incognita (Kofoid & White). Chitwoodi) on bambara ground nut (Vigna subterranea (L.) Verdc.) UNISWA Journal of Agriculture 11: 56-63. Linderman RG (1994) Role of VAM fungi in biocontrol. In: Pfleger FL, Linderman RG (eds) Mycorrhizae and plant health. APS, St Paul, pp 1-26 López-Pérez J-A, Roubtsova T, Ploeg A (2005) Effect of three plant residues and chicken manure used as biofumigants at three temperatures on Meloidogyne incognita infestation of tomato in greenhouse experiments.Journal ofNematology 37(4): 489-494. Mekete T, Johannes H, Sebastian K, Richard S (2009) Endophytic bacteria from Ethiopian coffee plants and their potential to antagonise Meloidogyne incognita. Nematology 11(1): 117-127. Mian I, Rodriguez-Kabana R (1982) Survey of the nematicidal properties of some organic materials available in Alabama as amendments to soil for control of Meloidogyne arenaria. Nematropica 12(2): 235-246. Mirekei K, Abdollahi M, Talaei F (2013) The effect of combination of Trichoderma virens and Glomus mosseae to control of Meloidogyne javanica on tomato. Biological Control of Pests and Plant Diseases 2(1): 9-16. (in Persian) Oka Y (2010) Mechanisms of nematode suppression by organic soil amendments a review. Applied Soil Ecology 44(2): 101-115. Oostenbrink M (1966) Major characteristics of the relation between nematods and plant. Madedelingen Landbouwhogeschool Wageningen 66(4): 1-46. Phillips JM, Hayman D S (1970) Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. Transactions of the British Mycological Society 55(1): 158-161. Raaijmakers JM, Van der Sluis I, Koster M, Bakker PAHM, Weisbeek PJ, Schippers B (1995) Utilization of heterologous siderophores and rhizosphere competence of fluorescent Pseudomonas spp. Canadian Journal of Microbiology 41:126-135. Rahman L, Somers T (2005) Suppression of root knot nematode (Meloidogyne javanica) after incorporation of Indian mustard cv. Nemfix as green manure and seed meal in vineyards. Australasian Plant Pathology 34(1): 77-83. Rodriguez-Kabana R (1986) Organic and inorganic nitrogen amendments to soil as nematode suppressants. Journal of Nematology 18: 129-135. Saleh H, Sikora R (1984) Relationship between Glomus fascicula tum root colonization of cotton and its effect on Meloidogyne incognita. Nematologica 30(2): 230-237. Shokoohi E, Abolafia J, Zad J (2007) Nematodes of the order Rhabditida from Tehran province, Iran. The genus Acrobeles von Linstow, 1877 with description of A. iranicus sp. n. Nematology  9 (4): 459-481. Shukla PK, Haseeb A (2002) Survey of farmer’s fields for the association of plant parasitic nematodes and wilt fungi with pigeonpea and quantification of losses. Indian Journal of Nematology 32(2):162–164. Siddiqi MR )2000(. Tylenchida: parasites of plants and insects. 2nd Edition, CABI Bioscience, Egham, UK. pp. 848. Siddiqui Z, Mahmood I, Khan M (1999) VAM fungi as prospective biocontrol agents for plant parasitic nematodes. Modern Approaches and innovations in soil management. Meerut, India: Rastogi 23: 47-58. Siddiqui ZA, Akhtar MS (2007) Effects of AM fungi and organic fertilizers on the reproduction of the nematode Meloidogyne incognita and on the growth and water loss of tomato.Biology and Fertility of Soils 43: 603-609. Siddiqui ZA, Akhtar MS (2008) Effects of organic wastes, Glomus intraradices and Pseudomonas putida on the growth of tomato and on the reproduction of the Root-knot nematode Meloidogyne incognita Phytoparasitica 36: 460-471. Singh R, Adholeya A, Mukerji KG (2000) Mycorrhiza in control of soil-borne pathogens. In: Mukerji KG,Chamola BP, Singh J (Eds.). Mycorrhizal Biology. Kluwer Academic Publishers, New York. pp: 173-196. Tavasoli A, Aliasgharzade N, Baybordi A (2009) Effects of arbuscular mycorrhizal fungi on growth, P and Zn uptake of field grown onion. 10 Th  Iranian Soil Science Congress14 , Karaj. Vierheilig H, Steinkellner S, Khaosaad, Garcia-Garrido JM(2008) The biocontrol effect of mycorrhization on soilborne fungal pathogens and the autoregulation of the AM symbiosis: one mechanism, two effects? In: Mycorrhiza, Berlin Heidelberg Springer 307-320._||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2017.137564.116 کنترل بیولوژیک علفهای هرز بررسی مورفولوژی و ترجیح میزبانی سوسک برگ‌خوار پیچک صحرایی Hypocassida subferruginea (Col., Chrysomelidae) در استان کردستان سیفی سونیا کارشناس ارشد، گروه گیاه‌پزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه کردستان صادقی امین استادیار، گروه گیاه‌پزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه کردستان غباری حامد استادیار، گروه گیاه‌پزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه کردستان 22 05 2017 6 1 53 62 06 12 2015 19 01 2017 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2017 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_62737.html

علف هرز پیچک صحرایی یکی از مهم‌ترین علف‌های هرز مزارع و باغات جهان است و تاکنون مطالعات بسیاری روی کنترل بیولوژیک این علف هرز صورت گرفته است که اکثر آن‌ها مربوط به کنترل این گیاه توسط حشرات است. در مزارع استان کردستان (شهرستان‌های سنندج، کامیاران و دیواندره) سوسک برگ‌خواری مشاهده شد که حشرات کامل و لاروهای سنین مختلف آن از برگ‌های پیچک صحرایی تغذیه می‌کنند. مطالعات ما نشان داد که سوسک مذکور گونه Hypocassida subferruginea (Col., Chrysomelidae) می‌باشد. بر طبق بررسی‌های انجام‌گرفته حشره کامل به رنگ قهوه‌ای متالیک و نر و ماده به‌ترتیب 5/4 و 3/5 میلی‌متر طول دارند. این حشره دارای پنج سن لاروی به انضمام پیش‌شفیرگی و شفیرگی است که طول بدن حشره در مراحل لارو سن یک، لارو سن دو، لارو سن سه، لارو سن چهار، لارو سن پنج، پیش‌شفیره و شفیره به‌ترتیب برابر با 1/0±5/1، 2/0±3/2، 5/0±0/3، 1/0±2/4، 1/0±1/5، 1/0±2/5 و 2/0±4/5 میلی‌متر است. فرم زمستانگذران این حشره به‌صورت حشره کامل است که در اوایل اردیبهشت‌ماه از خاک خارج می‌شوند و دارای پنج نسل در سال می‌باشند. همچنین نتایج آزمایش‌های ترجیح میزبانی نشان داد در بین گیاهان مورد آزمایش، شامل علف هرز پیچک صحرایی، گوجه‌فرنگی، سیب‌زمینی، نخود و گندم، سوسک H. subferruginea فقط از علف هرز پیچک صحرایی تغذیه می‌کند.

 تغذیه اجباری تغذیه اختیاری شکل‌شناسی علف هرز کنترل بیولوژیک Banayan M, Rahimian H (1995) Weeds biocontrol. Ferdossi University Press, Mashhad, Iran. (in Persian) Bean WD, Wang T, Bartel RJ, Zilkowski BW (2007) Diapause in the leaf beetle Diorhabda elongate (Coleoptera: Chrysomelidae), a biological control agent for Tamarisk (Tamarix spp.). Environmental Entomology 36(3): 531-540. Borowiec L (2000)Hypocassida convexipennis a new species from Iran (Coleoptera: Chrysomelidae: Cassidinae). Genus 11(4): 601-605. Khanjani M (2003) Field crop pests in Iran. 5th ed. Bu-Ali Sina University Press, Hamedan, Iran. (in Persian) Medal J, Bustamante N, Vitorino M, Beal L, Overholt W, Diaze R, Cuda J (2010)Host specificity tests of Gratiana graminea (Coleoptera:Chrysomelidae), a potential biological control agent of tropical soda apple, Solanum viarum (Solanaceae). Bio One 93(2): 231-242. Mirmoayedi AN (2005) The principles of insects classification. Razi University Press, Kermanshah, Iran. (in Persian) Mohammadi Khorramabadi A, Arzani A (2009) Study on host preference and leaf damage of Spodoptera littoralis larvae in four sugar beet cultivars under laboratory conditions. Sugar Beet 26(1):43-51. Mussavi M (1995) Biological control. Iranian academic center of education, culture and research, Mashhad, Iran. (in Persian) Pfirter HA, Ammon H, Guntli D, Greaves MP, Defago, G (1997) Towards the management of field bindweed (Convolvulus arvensis) and hedge bindweed (Calystegia sepium) with fungal pathogens and cover crops. Integrated Pest Management Reviews 2: 61-69. RashedMohassel MH, Najafi H, Akbarzadeh M (1999) Biology and weeds control. Ferdossi University Press, Mashhad, Iran. (in Persian) Rosenthal SS, Hostetteler N (1980) Galeruca rufa (Col.:Chrysomelida) seasonal life history and the effect of its defoliation on its host plant, Convolvulus arvensis (Convolvulaceae). Entomophaga 25(4): 381-388. Shameem KM, Prathapan KD (2013) A new species of Callispa keram Baly (Coleoptera, Chrysomelidae, Cassidinae, Callispini) infesting coconut palm (Cocos nucifera L.) in India. ZooKeys (269) 1. Singh S, Sharma DR (2014)Infestation of tortoise beetle, Cassida exilis Boheman (Coleoptera:Cassidinae) on Kinnow mandarin in India. Pest Management in Horticultural Ecosystems 20(1): 89-91. Warchalowski A (2010) The Palaearctic Chrysomelidae. Identification keys. Natura optima dux Foundation, Warsaw, Poland.  _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2017.62738 کنترل بیولوژیک آفات اثر کاربرد هم‌زمان قارچ بیمارگر Beauveria bassiana (Ascomycota, Hypocreales) و ارقام مختلف گندم روی شته روسی گندم Diuraphis noxia (Hem.: Aphididae) راشکی مریم استادیار، گروه تنوع زیستی، پژوهشکده علوم محیطی، پژوهشگاه علوم و تکنولوژی پیشرفته و علوم محیطی، دانشگاه تحصیلات تکمیلی صنعتی و فناوری پیشرفته، کرمان اسمعیل بیگی مژده کارشناس ارشد آزمایشگاه، گروه اکولوژی، پژوهشکده علوم محیطی، پژوهشگاه علوم و تکنولوژی پیشرفته و علوم محیطی، دانشگاه تحصیلات تکمیلی صنعتی و فناوری پیشرفته، کرمان 22 05 2017 6 1 63 72 14 04 2016 20 12 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2017 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_62738.html

اثر کاربرد هم‌زمان قارچ بیمارگر Beauveria bassiana جدایة DEBI008 و ارقام مختلف گندم روی ویژگی‌های زیستی شتة روسی گندم Diuraphis noxia در شرایط آزمایشگاهی (دمای 1±25 درجه سلسیوس، رطوبت نسبی 85 درصد، دوره نوری 16 ساعت روشنایی و 8 ساعت تاریکی) مورد مطالعه قرار گرفت. بدین‌منظور، تعداد 30 واحد آزمایشی از هر رقم گندم، هر کدام حاوی یک پوره سن اول آماده شد. این پوره‌ها از افراد کامل تیمار‌شده با قارچ بیمارگر با غلظت LC10 روی هر رقم به‌دست آمدند. تعداد پوره‌های تولید شده توسط هر شتة تیمار شده تا زمان مرگ به‌طور روزانه ثبت شد. داده ها بر اساس جدول زندگی دوجنسی و نرم‌افزار رایانه‌ای TWOSEX-MSChart تهیه وآنالیز شد. در تحقیق حاضر، کمترین مقدار LC10 قارچ متعلق به رقم ارگ بود؛ اما اثر معنی‌دار بر فراسنجه‌های جدول زندگی نتاج شته روی ارقام مختلف گندم نداشت. همچنین، طول دورة پورگی نتاج به استثنای سن اول، بین شاهد و تیمارها روی سه رقم مورد مطالعه اختلاف معنی­دار نداشت. تنها رقم الوند باعث طولانی‌تر شدن مرحلة حشره کامل حاصل از شته‌های تیمار شده با قارچ در مقایسه با دو رقم ارگ و پیشتاز شد. نتایج، نشان­دهندة اثر رقم گندم بر بیمارگری مستقیم قارچ روی شته روسی بود.

 جدول زندگی رقم شته مرحله رشدی Ahmadi A, Sarafrazi A (1993) Distribution and natural enemies of Russian wheat aphid Diuraphi snoxia (Mordvilko) in Fars province. In: the 11th Iranian Plant Protection Congress, 28 August -2 September, Gilan University, Rasht, Iran. 104. (in Persian) Akkopru EP, Atlihan R, Okut H, Chi H (2015) Demographic assessment of plant cultivar resistance to insect pests: A case study of the dusky-veined walnut aphid (Hemiptera: Callaphididae) on five walnut cultivars. Journal of Economic Entomology 108(2): 1-10. Bhattarai T, Hess D (1993) Yield responses of Nepalese spring wheat (Triticum aestivum) cultivars to inoculation with Azospirillum spp of Nepalese origin. Plant and Soil 151: 67-76. Brown GC, Prochaska GL, Hildebrand DF, Nordin GL, Jackson DM (1995) Green leaf volatiles inhibit conidial germination of the entomopathogen Pandora neoaphidis (Entomophthorales: Entomophthoraceae). Environmantal Entomology 24 (6): 1637-1643. Chen W, Leopold RA, Boetel MA (2010) Host plant effects on development and reproduction of the glassy-winged sharpshooter, Homalodis cavitripennis (Homoptera: Cicadellidae). Environmental Entomology 39: 1545-1553. Chi H (2015) TWOSEX-MSChart: a computer program for the age-stage, two-sex life table analysis.  http://140.120.197.173/Ecology (accessed 8 February 2015). Chi H, Liu H (1985) Two new methods for the study of insect population ecology. Bulletin of the Institute of Zoology 24: 225-240. Cory JS, Hoover K (2006) Plant-mediated effects in insect–pathogen interactions. Trends in Ecology and Evolution 21(5): 278-286. Duetting PS, Ding H, Neufeld J, Eigenbrode SD (2003) Plant waxy bloom on peas affects infection of pea aphids by Pandora neoaphidis. Journal of Invertebrate Pathology 84: 149-158. Ethel C (2007) Tritrophic interaction between whiteflies, insect pathogenic fungi and host plant. M.Sc., Sverigeslantbruksv Universitet (SLU), Sweden. Ezzatabadipoor Z, Shirvani A, Rashki M (2015)Effects of host plants on the susceptibility of Cowpea Aphid, Aphis craccivora (Hemiptera: Aphididae) to the entomopathogenic fungus, Beauveria bassiana (Ascomycota, Hypocreales). Journal of Entomological Society of Iran 35(1): 27-36. Feng MG, Johnson JB (1990) Relative virulence of six isolates of Beauveria bassiana on Diuraphis noxia (Homop: Aphididae). Environmental Entomology 19: 785-790. Hamm JJ, Wiseman BR (1986) Plant resistance and nuclear polyhedrosis virus for suppression of the fall armyworm (Lepidoptera: Noctuidae). Florida Entomologist 69: 541-549. Hare JD, Andreadis TG (1983) Variation in the susceptibility of Leptinotarsa decemlineata (Coleoptera: Chrysomelidae) when reared on different host plants to the fungal pathogen, Beauveria bassiana in the field and laboratory. Environmental Entomology12: 1892-1897. Inglis GD, Goettel MS, Butt TM, Strasser H (2001) Use of hyphomycetous fungi for managing insect pests, In: Butt TM, Jackson C, Magan N (eds.), Fungi as biocontrol agents: progress, problems and potential. CABI publishing, UK. pp. 23-69. Inyang EN, Butt TM, Beckett A, Archer S (1999) The effect of crucifer epicuticular waxes and leaf extracts on the germination and virulence of Metarhizium anisopliae conidia. Mycological Research 130: 419-426. Keathley CP, Harrison RL, Potter DA (2012) Baculovirus infection of the armyworm (Lepidoptera: Noctuidae) feeding on spiny- or smooth-edged grass (Festuca spp.) leaf blades. Biological Control 61: 147-154. Kelman WM, Qualset CO (1991) Breeding for salinity stressed environments: recombinant inbred wheat line under saline irrigation. Crop Science 31: 1223-1228. Kennedy GG (2003) Tomato, pests, parasitoids, and predators: tritrophic interactions involving the genus Lycopersicon. Annual Review of Entomology 48: 51-72. Lacey LA, Mercadier G (1998) The effect of selected allelochemicals on germination of conidia and blastospores and mycelial growth of the entomopathogenic fungus, Paecilomyces fumosoroseus (Deuteromycotina: Hyphomycetes). Mycopathologia 142: 17-25. Leathers TD, Subhash CG (1993) Susceptibility of the eastern tent caterpillar (Malacosoma americanum) to the entomogenous fungus Beauveria bassiana. Journal Invertebrate Pathology 61: 217-219. Ode PJ (2006) Plant chemistry and natural enemy fitness: effects on herbivore and natural enemy interactions. Annual Review of Entomology 51: 163-185. Park MK, Kim JG, Song YH, Lee JH, Shin KL, Cho K (2009) Effect of nitrogen levels of two cherry tomato cultivars on development, preference and honeydew production of Trialeurodes vaporariorum (Hemiptera: Aleyrodidae). Journal of Asia-Pacific Entomology 12: 227-232.  Poprawski TJ, Jones WJ (2000) Host plant effects on activity of the mitosporic fungi Beauveria bassiana and Paecilomyces fumosoroseus against two populations of Bemisia whiteflies (Homoptera: Aleyrodidae). Mycopathologia 151: 11-20. Price PW, Bouton CE, Gross P, McPheron BA, Thompson JN, Weis AE (1980) Interactions among three trophic levels: influence of plants on interactions between insect herbivores and natural enemies. Annual Review of Ecology and Systematics 11: 41-65. Rashki M, Kharazi-pakdel A, Allahyari H, van Alphen JJM (2009) Interactions among the entomopathogenic fungus, Beauveria bassiana (Ascomycota: Hypocreales), the parasitoid, Aphidius matricariae (Hym.: Braconidae), and its host, Myzus persicae (Hom.: Aphididae). Biological Control 50: 324-328. Shikano I, Ericsson J, Cory J, Myers JH (2010) Indirect plant-mediated effects on insect immunity and disease resistance in a tritrophic system. Basic and Applied Ecology 11: 15-22. Tanada Y, Kaya HK (1993) Insect pathology. Academic press, San Diego, CA. Tran P (1997) Plant proteinase inhibitors are potential anti cereal aphid compounds. Journal of Economic Entomology 90(6): 1672-1677. Ugine TA, Wraight SP, Brownbridge M, Sanderson JP (2005) Development of a novel bioassay for estimation of median lethal concentrations (LC50 ) and doses (LD50 ) of the entomopathogenic fungus Beauveria bassiana, against western flower thrips, Frankliniella occidentalis. Journal of Invertebrate Pathology 89: 210-218. Ugine TA, Wraight SP, Sanderson JP (2006) Effects of manipulating spray-application parameters on efficacy of the entomopathogenic fungus Beauveria bassiana against western flower thrips, Frankliniella occidentalis, infesting greenhouse impatiens crops. Biocontrol Science and Technology 5: 185-192. Ugine TA, Wraight SP, Sanderson JP (2007) A tritrophic effect of host plant on susceptibility of western flower thrips to the entomopathogenic fungus Beauveria bassiana. Journal of Invertebrate Pathology 96: 162-172. Vega FE, Dowd PF, McGuire MR, Jackson MA, Nelsen TC (1997) In vitro effects of secondary plant compounds on germination of blastospores of the entomopathogenic fungus Paecilomyces fumosoroseus (Deutromycotina: Hyphomycetes). Journal of Invertebrate Pathology 79: 209-213._||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2017.206254.153 دیگر روشهای مرتبط با بیوکنترل بررسی خصوصیات ضد‌میکروبی برخی سویه‌های Streptomyces دریایی بر علیه سه بیمارگر گیاهی شمس مهسا دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، گروه زیست‌شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه فردوسی مشهد شهنواز بهار استادیار، گروه زیست‌شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه فردوسی مشهد 22 05 2017 6 1 73 82 23 05 2016 19 01 2017 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2017 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_62758.html

در سال­های اخیر، استفاده از متابولیت‎های ثانویه مانند آنتی‌بیوتیک‌ها به ­منظور کنترل زیستی عوامل بیماریزای­ گیاهی مورد توجه قرار گرفته است. این پژوهش با هدف جداسازی، شناسایی و بررسی فعالیت ضدمیکروبی جدایه‌هایی از Streptomyces از دریای عمان علیه سه بیمارگر گیاهی Fusarium oxysporum، Xanthomonas campestris و Erwinia amylovora اجرا شد. سویه‌های Streptomyces روی محیط کشت‌های نشاسته کازیین اگار، گلیسرول گلیسین آگار و نشاسته نیترات آگار در غلظت‌های نمکی متفاوت جداسازی شدند. فعالیت ضدمیکروبی سویه‌ها با استفاده از کشت تقاطعی و اندازه‌گیری هاله عدم رشد در برابر بیمارگرهای گیاهی اندازه­گیری شد. 90% این سویه‌ها قادر به تولید هاله مهارکنندگی رشد در برابر باکتری X. campestris بودند که بالاترین هاله 1±15 میلی‌متر به‌دست آمد. دو سویه 130AC و 275AC برای استخراج ترکیب ضدمیکروبی انتخاب شدند. این سویه‌ها در محیط­های پیش­کشت و تخمیری مختلفی کشت داده شدند. استفاده از محیط‌های تخمیری مختلف نشان می‎دهد که محیط دارای گلیسرول و سویا هاله بازدارندگی را افزایش می­دهد. سویه‌های به‌دست آمده براساس ژن SrRNA16 متعلق به گونه‌هایStreptomyces sp. می‎باشند. جهت استخراج ترکیب ضدمیکروبی از حلال آلی دی‎کلرومتان، کلروفرم و اتیل‌استات استفاده گردید. حلال دی‌کلرومتان در سویه 130 ACو کلروفرم در سویه 275AC با ایجاد هاله مهارکنندگی 21 و 25 میلی‌متر مؤثرتر از سایر حلال‌ها بودند. این مطالعه نشان می‎دهد که برخی جدایه‌های Streptomyces در محیط‎های دریایی کمتر کاوش شده، دارای قابلیت کنترل باکتری‎های بیماریزای گیاهی می‌باشند که می‌توانند مورد استفاده قرار گیرند.

 Streptomyces دریایی بیمارگرهای گیاهی دریای عمان فعالیت ضدمیکروبی Anitha, A, Rebeeth, M (2009) In vitro antifungal activity of Streptomyces griseus against phytopathogenic fungi of tomato field. Academic Journal of Plant Sciences 2: 119-123. Arasu MV, Duraipandiyan V, Agastian P, Ignacimuthu S (2009) In vitro antimicrobial activity of Streptomyces spp. ERI-3 isolated from Western Ghats rock soil (India) Journal de Mycologie Médicale 19: 22-28 Arifuzzaman M, Khatun M, Rahman H (2010) Isolation and screening of actinomycetes from Sundarbans soil for antibacterial activity. African Journal of Biotechnology 9: 4614-4619. Attimarad SL, Ediga GN, Karigar AA, Karadi R, Chandrashekhar N, Shivanna C (2012) Screening, isolation and purification of antibacterial agents from marine actinomycetes. International Current Pharmaceutical Journal 1(12): 394-402. Barke J, Seipke RF, Grüschow S, Heavens D, Drou N, Bibb, MJ, Goss RJM, Yu DW, Hutchings MI (2010) A mixed community of actinomycetes produce multiple antibiotics for the fungus farming ant Acromyrmex octospinosus. BMC Biology 8: 109-119. Bredholt H, Fjærvik E, Johnsen G, Zotchev SB (2008) Actinomycetes from sediments in the Trondheim fjord, Norway: diversity and biological activity. Marine Drugs 6(1): 12-24. Bu YY, Yamazaki H, Ukai K, Namikoshi M (2014) Anti-Mycobacterial Nucleoside Antibiotics from a Marine-Derived Streptomyces sp. TPU1236A. Marin Drugs 12(12): 6102–6112. Debnath R, Saikia R, Sarma RK, Yadav A, Bora TC, Handique PJ(2013) Psychrotolerant antifungal Streptomyces isolated from Tawang, India and the shift in chitinase gene family. Extremophiles 17: 1045-1059. Duraipandiyan V, Sasi AH, Islam VIH, Valanarasu M, Ignacimuthu S (2010) Antimicrobial properties of actinomycetes from the soil of Himalaya. Journal of Medical Mycology 20(1): 15-20. Fenical W, Jensen PR (2006) Developing a new resource for drug discovery: marine actinomycete bacteria. Nature chemical biology 2(12): 666-673. Gulve RM, Deshmukh AM (2011) Enzymatic activity of actinomycetes isolated from marine sediments. Recent Research in Science and Technology 3: 80-83. Hamedi J, Mohammadipanah F, Amoozegar MA, Dehghan S (2007) Isolation of a new moderately halophilic broad-spectrum antibiotic producing actinobacter. Jundishapur Journal of Natural Pharmaceutical Products 2(2): 94-104. Hamedi J, Mohammadipanah F (2008) Isolation, determination and evaluation of antifungal activity some Iranian actinomycetes against three plant pathogenic fungi. Entomology and Phytopathology 76(2): 33-53. Helmke E, Weyland H (1984) Rhodococcus marinonascens sp. nov., an actinomycete from the sea. International Journal of Systematic Bacteriology 34(2), 127-138. Hohmann C, Schneider K, Christina B, Elisabeth Irran E et al, (2009) Caboxamycin, a new antibiotic of the benzoxazole family produced by the deep-sea strain Streptomyces sp. NTK 937. The Journal of Antibiotics 62: 99-104. Intra B, Mungsuntisuk I, Nihira T, Igarashi Y, Panbangred W (2011) Identification of actinomycetes from plant rhizospheric soils with inhibitory activity against Colletotrichum spp., the causative agent of anthracnose disease. BMC Research Notes 4:98-107. Jog R, Nareshkumar G Rajkumar S (2012) Plant growth promoting potential and soil enzyme production of the most abundant Streptomyces spp. from wheat rhizosphere. Journal of Applied Microbiology 113(5): 1154-1164. Kathiresan K, Balagurunathan R, Selvam MM (2005) Fungicidal activity of marine actinomycetes against phytopathogenic fungi. Indian Journal of Biotechnology 4: 271-276. Kuster E, Williams ST (1964) Selection of media for isolation of streptomycetes. Nature 202: 928-929 Lane DJ (1991) 16S/23S rRNA sequencing.In: Stackebrandt E, Goodfellow M, editors. Nucleic acid techniques in bacterialsystematics. Chichester, United Kingdom: John Wiley and Sons. 115–175. Leyns F, De Cleene M, Swings J, De Ley J (1984) The host range of the genus Xanthomonas. The Botanical Review 50(3):305-355.  Liu LL, Xu Y, Han Z, Li YX, Lu L, Lai PY,Zhong JL, GuoXR, Zhang XX, Qian PY (2012) Four New Antibacterial Xanthones from the Marine-Derived Actinomycetes Streptomyces caelestis, Marin Drugs 10(11): 2571-2583. Manivasagan P, Venkatesan J, Sivakumar K, Kim SK (2013) Marine actinobacterial metabolites: Current status and future perspectives. Microbiological Research, 168(6):311-332. Marchesi JR, Sato T, Weightman AJ, Martin TA, Fry JC, Hiom SJ, Wade WG (1998) Design and evaluation of useful bacterium-specific PCR primers that amplify genes coding for bacterial 16S rRNA. Applied and Environmental Microbiology 64: 795-799 Nelson PE, Toussoun TA, Cook RJ (1981) Fusarium, diseases, biology and taxonomy. University Park, PA, USA. Ng YK, Hewavitharana AK, Webb R, Shaw PN, Fuerst JA (2013) Developmental cycle and pharmaceutically relevant compounds of Salinispora actinobacteria isolated from Great Barrier Reef marine sponges. Applied Microbiology and Biotechnology 97(7): 3097-3108. Palaniyandi SA, Yang SH, Zhang L, Suh JW (2013) Effects of Actinobacteria on plant disease suppression and growth promotion. Applied Microbiology and Biotechnology 97(22): 9621-36. Radhakrishnan M, Suganya S, Balagurunathan R, Kumar V (2010) Preliminary screening for antibacterial and antimycobacterial activity of actinomycetes from less explored ecosystems. World Journal of Microbiology and Biotechnology 26(3): 561-566. Reading C, Cole M (1977) Clavulanic acid: a β-lactam from Streptomyces clavuligerus. Antimicrobial Agents and Chemotherapy 11(5): 852-57. Thumar JT, Dhulia K, Singh SP (2010) Isolation and partial purification of an antimicrobial agent from halotolerant alkaliphilic Streptomyces aburaviensis strain Kut-8. World Journal of Microbiology and Biotechnology 26(11): 2081-2087. Wink J(2002) The Actinomycetales, An order in the class of Actinobacteria important to the pharmaceutical industry- Electronic manual, Aventis Pharma Deutschland Gmbh. Zeng Q, Huang H, Zhu J, Fang Z, Sun Q, Bao S (2013) A new nematicidal compound produced by Streptomyces albogriseolus HA10002. Antoine Van Leeuwenhoek 103(5): 1107-1111._||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2017.200920.133 کنترل بیولوژیک بیمایهای گیاهی کارایی باکتریهای اندوفیت خیار در کنترل نماتد Meloidogyne javanica در شرایط آزمایشگاه و گلخانه امینی فرخنده دانشجوی کارشنا‏سی‏ ارشد، گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد مهدیخانی مقدم عصمت استاد، گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد بقائی راوری ساره دانشیار گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد 22 05 2017 6 1 83 92 22 10 2016 04 02 2017 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2017 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_62759.html

در‍حال‍حاضر، نماتد ریشه‍گرهیMeloidogyne javanica به‍عنوان یک معضل مهم در گلخانه‍های خیار کشور مطرح است. در بررسی‍حاضر جهت کنترل بیولوژیک نماتد ریشه‍گرهی از باکتری‍های اندوفیت استفاده گردید. تعداد 70 جدایه باکتری از ریشه خیار مزارع و گلخانه‍های استان خراسان رضوی جداسازی شدند. براساس نتایج آزمایشات سنجش‍زیستی، هفت جدایه که بیشترین درصد مرگ‍و‍میر لارو سن‍دوم و عدم‍تفریخ تخم نماتد  javanica .M را نشان دادند، به‍عنوان جدایه منتخب، از نظر توانایی‍کاهش شاخص‍های بیماریزایی در گیاه خیار مورد بررسی قرار گرفتند. جدایه‌هایFm1، Em1 و Y15 به‍طور قابل‍توجهی در کاهش تعداد تخم، گال و لارو سن‍دوم در ریشه‍های خیار آلوده، مثبت ارزیابی شدند. پایین‍ترین شاخص گال، در‍ کاربرد این سه جدایه در مقایسه با شاهد آلوده‍ به ‍نماتد، مشخص‍گردید. برپایه توالی‍‍یابی ناحیه ‍rDNA 16S، دو جدایه منتخب Fm1 و Em1 در آزمون‍های گلخانه‍ای، متعلق به گونه Pseudomonas rhodesiae و جدایه Y15 متعلق به گونه Acinetobacter sp. می‍باشند. بر‍اساس نتایج بررسی‍حاضر، به‍نظر می‍رسد که جدایه‌های Em1 و Fm1 و Y15 گزینه‍های مناسبی جهت تحقیقات بیشتر در زمینه کنترل نماتد ریشه‍گرهی در شرایط طبیعی باشند.

 باکتری های اندوفیت خیار شاخصهای بیماریزایی نماتد نماتد ریشه گرهی Abdolghafar NY, Abolsayed WM (1997) Biological control of soft rot of potato fluorescent pseudomonads. Arab Universities Journal of Agricultural Science, 5: 419-431 Anonymous (2011) Economic affair and programming adjunct. Khorasan Razavi Agricultural Jahad Organization. (in Persian) Anonymous (2013) Statistical yearbook of the food and agriculture organization of the United Nations. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome, Italy. Aravind R, Eapen SJ, Kumar AA, Ramana KV (2009) Isolation and evaluation of endophytic bacteria against plant parasitic nematodes infesting black pepper (Piper nigrum L.). Indian Journal of Nematology 39: 211-217. Compant S, Reiter B, Sessitsch A, Nowak J, Clement C, Ait Barka E (2005) Endophytic colonization of Vitis vinifera L. by plant growth-promoting bacterium Burkholderia sp. strain PsJN. Applied and Environmental Microbiology 71: 1685-1693. Damadzadeh M (2007) Nematology in Agriculture. Andishe Gostar Publisher, Esfehan. 199pp. (in Persian) Ganesan P, Gnanamanickam SS (1987) Biological control of Sclerotium rolfsii sacc. in peanut by inoculation with Pseudomonas fluorescens, Soil Biology and Biochemistry 19(1): 35-38. Garbeva P, van Overbeek LS, van Vuurde JWL, van Elsas JD (2001) Analysis of endophytic bacterial communities of potato by plating and denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) of 16S rDNA based PCR fragments. Microbial Ecology 41: 369-383. Hallmann J, Quadt-Hallmann A, Mahaffee WF, Kloepper JW (1997) Bacterial endophytes in agricultural crops. Canadian Journal of Microbiology 43: 895-914. Hallmann J, Quadt-Hallmann, Miller WG, Sikora RA, Lindow SE (2001) Endophytic colonization of plants by the biocontrol agent Rhizobium etli G12 in relation to Meloidogyne incognita infection. Phytopathology 91: 415-422. Hass D, Defago W (2005) Biological control of soil-borne-pathogens by fluorescent pseudomonads. Nature Reviews Microbiology 3: 307-319. Hussey RS, Barker KR (1973) A comparison of methods of collecting inocula of Meloidogyne spp. including a new technique. Plant Disease Reporter57: 1025-1028. Jepson SB (1987) Identification of root-knot Nematode (Meloidogyne) species. CAB International, Wallingford, UK, 265pp. Keel C, Defago G (1997) Interactions between beneficial soil bacteria and root pathogens: mechanisms and ecological impact. In: Gange AC, Brown VK, (eds.). Multitrophic interactions in terrestrial system. Oxford: Blackwell Science. Khosravi M, Khosravi K (2015) Complete and illustrated guide of greenhouse cucumber growing. Amozesh and Tarvij Publisher, 193pp. (in Persian) Munif A, Hallmann J, Sikora RA (2001) Induced systemic resistance of selected endophytic bacteria against Meloidogyne incognita on tomato. Communications in Agricultural and Applied Biological Sciences 66: 663-669. Nagarajkumar M, Bhashkaran R, Velazhahan R (2004) Involvement of secondary metabolites and extracellular lytic enzymes produced by Pseudomonas fluorescens in inhibition of Rhizoctonia solani, the rice, sheath blight pathogen. Journal of Microbiology 159:73-81. Oliveira ASD, Campos VP, Silva JRC, Oliveira MS, Souza RMD (2009) Effect of endophytic bacteria on Meloidogyne javanica and inoculation methods in tomato. Nematologia Brasileira 33: 45-53. Owen A, Zlor R (2001) Effect of cyanogenic rhizobacteria on the growth of velvetleaf (Abutilon theophrasti) and Corn (Zea mays) in autoclaved soil and the influence of supplemented glycine. Journal of Soil Biochemistry 33: 801-809. Padgham JL, Sikora RA (2007)Biological control potential and modes of action of Bacillus megaterium against Meloidogyne graminicola on rice. Journal of Crop Protection 26: 971-977. Pinho RSC, Campos VP, Souza RMD, Silva JRC, Oliveira MS, Pimentel GCS, Costa LSAS (2009) Effect of endophytic bacteria on the control of Meloidogyne incognita and their capacity of root colonization of tomato. Nematologia Brasileira 33: 54-60. Pormehr S, Shirzad A, Khakvar R, Moslehi Sh, Hamidzadeh A (2014) Study the efficacy of some endophytic bacteria strains on Meloidogyne incognita egg hatch. In: 21th Iranian Plant Protection Congress, Orumia, Iran. (in Persian) Pradeepa V, Jennifer M (2013) Screening and characterization of endophytic bacteria isolated from Tabernaemontana divaricata plant for cytokinin production. Advanced Biotechnology13: 12-17. Quesenberry KH, Baltensperger DD, Dunn RA, Wilcox CJ, Hardy SR (1989) Selection for tolerance to root-knot nematodes in red clover. Crop Science 29: 62-65. Raaijmakers JM, Weller DM (2001) Exploiting genotypic diversity of 2, 4-diacetyl phloroglucinol producing Pseudomonas spp. characterization of superior root-colonizing P. fluorescens strain Q8r1-96. Applied and Environmental Microbiology 67: 2545-2554. Rashid Sh, Charles TC, Glick BR (2012) Isolation and characterization of new plant growth-promoting bacterial endophytes. Applied Soil Ecology 61: 217-224. Romero FM,  Marina M, Pieckenstain FL (2015) Novel components of leaf bacterial communities of field-grown tomato plants and their potential for plant growth promotion and bio control of tomato diseases. Research in Microbiology 43: 1-12. Sambrook J, Fritsch EF, Maniatis T (1989) Molecular cloning: A laboratory manual. 2nd ed. Gold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY. Sardi R, Saracchi M, Quaroni S, Petrolini B, Borgonovi GE, Merli S (1992) Isolation of endophytic Streptomyces strains from surface disinfested roots. Applied and Environmental Microbiology 58: 2691- 2693. Sharon E, Bar-Eyal M, Chet I, Herrera-Esterella A, Keleifeld O, Spiegel Y (2001) Biological control of the root-knot nematode Meloidogyne javanica by Trichoderma harzianum. Plant parasitic in subtropical and tropical agriculture. CAB International, 91: 687-693. Siddiqui IA, Shaukat SS (2003) Impact of biocontrol Pseudomanas fluorescens CHAO and its genetically modified (GM) derivatives on penetration of Meloidogyne javanica in mungbean roots. Nematology Mediterranean 31: 43-45. Siddiqui IA, Shaukat SS, Sheikh IH, Khan A (2006) Role of cyanide production by Pseudomonas fluorescens CHA0 in the suppression of root-knot nematode, Meloidogyne javanica in tomato. World Journal of Microbiology and Biotechnology 22: 641-650. Sikora RA (1992) Management of the antagonistic potential in agricultural ecosystem for the biological control of plant parasitic nematodes. Annual Review of Phytopathology30: 245-270. Sturz AV, Kimpinski J (2004) Endoroot bacteria derived from marigolds (Tagetes spp.) can decrease soil population densities of root-lesion nematodes in the potato root zone. Plant Soil 262: 241-249. Sullivan ODJ, Gara OF (1992) Traits of fluorescent Pseudomonas spp. involved in suppression of plant root pathogen. Journal of Microbiology 56: 662-676. Taba S, Sawada J, Moromizato ZI (2007) Nematicidal activity of Okinawa island plants on the root-knot nematode (Kofoid and White) Chitwood. Plant Soil 303: 207-216. Tamura K, Dudley J, Nei M, Kumar S (2007) MEGA4: Molecular Evolutionary genetics analysis (MEGA) software version 4.0. Molecular Biology and Evolution 24: 1596-1599. Thompson JD, Higgins DG, Gibson TJ (1994) CLUSTAL W: improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position specific gap penalties and weight matrix choice. Nucleic Acids Research 22: 4673-4680. Vetrivelkalai P, Sivakumar M, Jonathan EI (2010) Bio-control potential of entophytic bacteria on Meloidogyne incognita and its effect on plant growth in bhendi. Journal of Biopesticides 3: 452-457. Vyas P, Rahi P, Gulati A (2009) Stress tolerance and genetic variability of phosphate-solubilizing fluorescent Pseudomonas from the cold deserts of the trans-Himalayas. Microbial Ecology58: 425-434. Weisburg WG, Barns SM, Pelletier DA, Lane DJ (1991) 16S Ribosomal DNA amplification for phylogenetic study. Journal of Bacteriology 173: 697-703._||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2017.220985.178 کنترل بیولوژیک بیمایهای گیاهی تأثیر بیوفیلم تولید شده توسط ریزوباکتری‌های پروبیوتیک گیاهی بر کلنیزاسیون ریشه و رشد گیاه گندم خضری مریم استادیار گروه گیاه پزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ارومیه 22 05 2017 6 1 93 102 25 11 2016 16 03 2017 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2017 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_62947.html

به منظور بررسی پتانسیل باکتری پروبیوتیک Bacillus subtilis در تولید بیوفیلم و کلنیزاسیون ریشه گندم، از 11 سویه این باکتری استفاده شد. آزمایش­ها در قالب طرح کاملا تصادفی و در چهار تکرار انجام شد. بنابر نتایج حاصل از این پژوهش، میزان تولید بیوفیلم و بیوسورفکتانت­ها در ریزوباکتری­های مورد مطالعه تنوع بالایی نشان داد و بیشترین مقدار تولید این متابولیت­ها در سویه­های B3، B1 و B4 دیده شد. بررسی میزان کلنیزاسیون با استفاده از باکتری­های موتانت مقاوم به آنتی­بیوتیک­های ریفامپی­سین و نالیدیکسیک­اسید انجام شد. سویه­های B4 و B3  به ترتیب با جمعیت­های FU/g  107×41/4 و cfu/g 107×35/4، بیشترین میزان کلنیزاسیون ریشه را نسبت به سایر سویه­ها داشتند. میزان تشکیل بیوفیلم و تولید بیوسورفکتانت­ها با کلنیزاسیون ریشه گندم به ترتیب 74/0 و 80/0 همبستگی داشتند. در بخش دیگر این تحقیق، اثر این سویه­ها روی فاکتورهای رشدی گیاه گندم مورد ارزیابی قرار گرفت. کلیه سویه­ها موجب افزایش طول ریشه و اندام هوایی شدند و بیشتر سویه­ها اثر افزایشی در وزن خشک ریشه و اندام هوایی نشان دادند. براساس یافته­های این پژوهش، سویه­های باکتری که پتانسیل بالایی در تولید بیوفیلم و بیوسورفکتانت­ها داشتند، ریشه گندم را به خوبی کلنیزه نمودند و غالب سویه­ها اثر افزاینده روی فاکتورهای رشدی گندم نشان دادند.

 باسیلوس سابتیلیس بیوفیلم بیوسورفکتانت‌ها پروبیوتیک محرک رشد Afsharmanesh H, Ahmadzadeh M (2016) The Iturin lipopeptides as key compounds in antagonism of Bacillus subtilis UTB96 toward Aspergillus flavus. Biological Control of Pests and Plant Diseases 5: 79-95. (in Persian)  Ahmadzadeh M (2013) Biological control of plant diseases, plant probiotic bacteria. University of Tehran Press, Iran. 479 pp. (in Persian) Ashtar HN, Zahir ZA, Arshad M (2004) Screening rhizobacteria for improving the growth, yield and oil content of canola (Brassica napus L.). Australian Journal of Agriculture Research 55: 187-194. Bais HP, Fall R, Vivanco JM (2004) Biocontrol of Bacillus subtilis against infection of Arabidopsis roots by Pseudomonas syringae is facilitated by biofilm formation and surfactin production. Plant Physiology 134: 307-319. Balouiri M, Sadiki M, Ibnsouda SK (2016) Methods for in vitro evaluating antimicrobial activity: A review. Journal of Pharmaceutical Analysis 6: 71-79. Berg G, Kurze S, Buchner A, Wellington EM, Smalla K (2000) Successful strategy for the selection of new strawberry-associated rhizobacteria antagonistic to Verticillium wilts. Canadian Journal of Microbiology 46: 1128-1137. Boyd CD, Smith TJ, El-Kirat-Chatel S, Newell PD, DufrêneYF, O’Toole GA (2014) Structural features of the Pseudomonas fluorescens biofilm adhesin LapA required for LapG-dependent cleavage, biofilm formation and cell surface localization. Journal of Bacteriology 196: 2775-2788. Branda SS, Vik A, Friedman L, Kolter R (2005) Biofilms: the matrix revisited. Trends Microbiology 13: 20-26. Cherif-Silini H, Silini A, Yahiaoui B, Ouzari I, Boudabous A (2016) Phylogenetic and plant growth promoting characteristics of Bacillus isolated from the wheat rhizosphere. Annals of Microbiology 66: 1087-1097. Damalas CA, Koutroubas SD (2016) Farmers’ exposure to pesticides: toxicity types and ways of prevention. Toxics 4: 1; Doi: 10.3390/toxics4010001. Egamberdieva D (2010) Growth response of wheat cultivars to bacterial inoculation in calcareous soil. Plant, Soil and Environment 56: 570-573. Ellis RJ, Timms-Wilson TM, Bailey MJ (2000) Identification of conserved traits in fluorescent pseudomonads with antifungal activity. Environmental Microbiology 2: 274-284. Epstein AK,Pokroy B, Seminara A,Aizenberg J (2011) Bacterial biofilm shows persistent resistance to liquid wetting and gas penetration. PNAS 108: 995-1000. Hsieh F, Li M, Lin T, Kao S (2004) Rapid detection and characterization of surfactin producing Bacillus subtilis and closely related species based on PCR. Current Microbiology 49: 186-191. Johansson PM, Johnsson L, Gerhardson B (2003) Suppression of wheat-seedling diseases caused by Fusarium culmorum and Microdochium nivale using bacterial seed treatment. Plant Pathology 52: 219-227. Kamilova F, Validov S, Azarova T, Mulders I, Lugtenberg B (2005) Enrichment for enhanced competitive plant root tip colonizers selects for a new class of biocontrol bacteria. Environmental Microbiology 7: 1809-1817. Karnwal A (2012) Screening of plant growth–promoting rhizobacteria from maize (Zea mays) and wheat (Triticum aestivum).African Journal of Food, Agriculture, Nutrition and Development 12: 6171-6185. Kearns DB (2008) Division of labour during Bacillus subtilis biofilm formation. Molecular Microbiology 67: 229-231. Kempf HJ, Wolf G (1989) Erwinia herbicola as a biocontrol agent of Fusarium culmorum and Puccinia recondite f. sp. tritici on wheat. Phytopathology 79: 990-994. Khezri M, Ahmadzadeh M, Salehi-Jouzani Gh, Behboudi K, Ahangaran A, Mousivand M, Rahimian H (2011)Characterization of some biofilm-forming Bacillus subtilis and evaluation of their biocontrol potential against Fusarium culmorum. Journal of Plant Pathology 93: 373-382. Khezri M (2016) Influence of some environmental and nutritional conditions on biofilm formation of probiotic Bacillus subtilis strains. Biological Control of Pests and Plant Diseases 4: 157-165. (in Persian) Khezri M, Ahmadzadeh M, Salehi Jouzani Gh, Sharifi R (2016)A new gene involving in biofilm formation of Bacillus subtilis. 11: 245-259. (In Persian). Kinsella K, Schulthess CP, Morris TF, Stuart JD (2009)Rapid quantification of Bacillus subtilis antibiotics in the rhizosphere. Soil Biology and Biochemistry 41: 374-379. Kobayashi K (2007) Bacillus subtilis pellicle formation proceeds through genetically defined morphological changes. Journal of Bacteriology 189: 4920-4931. Kraus J, Loper JE (1995) Characterization of a genomic region required for production of the antibiotic pyluteorin by the biological control agent Pseudomonas fluorescens Pf-5. Applied and Environmental Microbiology 61: 849-854. Majeed A, Kaleem Abbasi M, Hameed S, Imran A, Rahim N (2015) Isolation and characterization of plant growth-promoting rhizobacteria from wheat rhizosphere and their effect on plant growth promotion. Frontiers in Microbiology 6: 198; Doi: 10.3389/fmicb.2015.00198. Mansouripour SM, Alizadeh A, Safaei N (2008)Biocontrol ability and population dynamics of bacterial antagonists against Sclerotinia sclerotiorum in canola. Iranian Journal of Plant Pathology 44: 233-251. Molina MA, Ramos JL, Urgel ME (2003) Plant-associated biofilms. Review in Environmental Science and Biotechnology 2: 99-108. Morikawa M, Kagihiro S, Haruki M, Takano K, Branda S, Kolter R, Kanaya S (2006) Biofilm formation by a Bacillus subtilis strain that produces γ-polyglutamate. Microbiology 152: 2801-2807. Morris C, Monier JM (2003) The ecological significance of biofilm formation by plant-associated bacteria. Annual Review of Phytopathology 41: 429-453. Nagórska K, Hinc K, Stauch MA, Obuchowski M (2008) Influence of the sigmaB stress factor and yxaB, the gene for a putative exopolysaccharide synthase under sigmaB control, on biofilm formation. Journal of Bacteriology 190: 3546-3556. Nasraoui B, Hajlaoui MR, Aïssa AD, Kremer RJ (2007) Biological control of wheat take-all disease: I-Characterization of antagonistic bacteria from diverse soils toward Gaeumannomyces graminis var. tritici. Tunisian Journal of Plant Protection 2: 23-34. Ongena M, Jacques P (2007)Bacillus lipopeptides: versatile weapons for plant disease control. Trends Microbiology 16: 115-125. Prigent-Combaret C, Vidal O, Dorel C, Lejeune P (1999) Abiotic surface sensing and biofilm-dependent regulation of gene expression in Escherichia coli. Journal of Bacteriology 181: 5993-6002. Pyoung K, Ryu J, Kim YH, Chi WT (2010) Production of biosurfactant lipopeptides Iturin A, Fengycin, and Surfactin a from Bacillus subtilis CMB32 for control of Colletotrichum gloeosporioides. Journal of Microbiology and Biotechnology 20: 138-145. Sadekuzzaman M, Yang S, Mizan MFR, Ha SD (2015) Current and recent advanced strategies for combating biofilms. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety 14: 491-509. Sauer K (2003) The genomics and proteomics of biofilm formation. Available on line at: http://genomebiology.com. Stanley NR, Britton RA, Grossman AD, Lazazzera BA (2003) Identification of catabolite repression as a physiological regulator of biofilm formation by Bacillus subtilis by use of DNA microarrays. Journal of Bacteriology 185: 1951-1957. Timmusk S, Paalme V, Lagercratz U, Nevo E (2007)Detection and quantification of plant drought tolerance enhancing bacterium Paenibacillus polymyxa in the rhizosphere of wild barley (Hordeum spontaneum) with real-time PCR. Journal of Applied Microbiology 107: 736-745. Ul Hassan T, Bano A (2015) The stimulatory effects of L-tryptophan and plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) on soil health and physiology of wheat. Journal of Soil Science and Plant Nutrition 15: 190-201. Vejan P, Abdullah R, Khadiran T, Ismail S, Nasrulhaq Boyce A (2016) Role of plant growth promoting rhizobacteria in agricultural sustainability-a review. Molecules 21: 573; Doi: 10.3390/molecules21050573. Weller DM, Cook RJ (1983) Suppression of take-all of wheat by seed treatment with fluorescent pseudomonades. Phytopathology 73: 463-469. Yan Z, Reddy MS, Kloepper JW (2003) Survival and colonization of rhizobacteria in a tomato transplant system. Canadian Journal of Microbiology 49: 383-389. Yaryura PM, Leo M, Correa, OS, Kerber NL, Pucheu NL, García AF (2008) Assessment of the role of chemotaxis and biofilm formation as requirements for colonization of roots and seeds of soybean plants by Bacillus amyloliquefaciens BNM339. Current Microbiology 56: 625-632. Zahid M, KaleemAbbasi M, Hameed S, Rahim N (2015) Isolation and identification of indigenous plant growth promoting rhizobacteria from Himalayan region of Kashmir and their effect on improving  growth and nutrient contents of maize (Zea mays L.). Frontiers in Microbiology 6: 207; Doi: 10.3389/fmicb.2015.00207. Zeriouh H, de Vicente A, Pérez-García A, Romero D (2014)Surfactin triggers biofilm formation of Bacillus subtilis in melon phylloplane and contributes to the biocontrol activity. Environmental Microbiology 16: 2196-2211._||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2017.202734.137 کنترل بیولوژیک آفات تولید دو قارچ‌ بیمارگر حشرات Beauveria bassiana و Metarhizium anisopliae با کشت دو مرحله‌ای بر روی مواد طبیعی بی غم ضرغام دانشجوی دکتری گروه گیاهپزشکی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج طلایی حسنلویی رضا استاد گروه گیاهپزشکی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج 22 05 2017 6 1 103 109 10 03 2016 05 02 2017 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2017 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_63275.html

از بین عوامل بیوکنترل، قارچ­های بیمارگر حشرات به دلیل مسیر خاص ایجاد آلودگی و دامنه میزبانی وسیع، اهمیت ویژه‌ای دارند. Beauveria bassiana و Metarhizium anisopliae قارچ­های بیمارگری هستند که علیه بسیاری از آفات مورد استفاده قرار می‌گیرند. در دسترس‌ بودن بیمارگر در مقیاس وسیع، نیاز اولیه در برنامه­های کنترل بیولوژیک است. در این مطالعه محیط­های مختلف طبیعی از محصولات جانبی کشاورزی و صنایع مانند سبوس گندم، ضایعات ماکارونی، کاه و پوست سیب‌زمینی همراه با مواد مکمل غذایی مانند اوره، ساکارز و آب پنیر در دو سطح مختلف با روش کشت دو مرحله­ای مایع و جامد برای تولید کنیدی قارچ­های B. bassiana و M. anispoliae مورد ارزیابی قرار گرفتند. بیشترین تولید کنیدی برای B. bassiana در محیط سبوس گندم همراه با آب پنیر 8 درصد (1010×2/3 کنیدی بر گرم محیط) و برای M. anisopliae بیشترین کنیدی در محیط ضایعات ماکارونی همراه با آب پنیر 8 درصد (1010×11/2 کنیدی بر گرم محیط) در مدت 14 روز مشاهده شد. نتایج حاصل از این آزمایش می­تواند در تولید انبوه قارچ­های بیمارگر حشرات مورد استفاده قرار بگیرد.

 تولید کنیدی ضایعات ماکارونی قارچ کنترل میکروبی Afandhi A, Chailani SR, Wati A (2012)Evaluation of sucrose for in vitro germination and growth of the entomopathogenic fungus Beauveria bassiana (BALSAMO) VUILLEMIN and Paecilomyces sp. (DEUTEROMYCETES, MONILIALES). Journal of Tropical Plant Protection 1(1): 39-45. Bena-Molaei P, Talaei-Hassanlouie R, Askary H, Kharazi-Pakdel A (2009) Study on potential of some solid natural substances in production of Beauveria bassiana (Ascomycota, Cordycipitaceae) conidia. Journal of Entomological Society of Iran 30(2): 1-15. (in Persian) Bena-Molaei P, Talaei-Hassanloui R, Askary H (2011) Effect of culture substrates on virulence of Beauveria bassiana (Ascomycota: Cordycipitaceae) conidia against the browntail moth, Euproctis chrysorrhoea (Lepidoptera: Lymantriidae). Biocontrol Science and Technology 21(5): 619-624. Beristain ST, Gonzalez GV, Godinez GD, Loera O (2009) Medium selection and effect of higher oxygen concentration pulses on Metarhizium anisopliae var. lepidiotum conidial production and quality. Mycopathologia 169: 387-394. Bhadauria BP, Puri S, Singh PK (2012) Mas production of entomopathogenic fungi using agricultural products. The Bioscan 7(2): 229-232. Dalla Santa HS, Dalla Santa OR, Brand D, Vandenberghe LPS, Soccol CR (2005) Spore production of Beauveria bassiana  from agroindustrial residues. Brazilian Archives of Biology and Technology 48: 51-60. El Damir M (2006) Effect of growing media and water volume on conidial production of Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae. Jornal of Biological Science 6(2): 269-274. Elson MK, Schisler DA, Jackson MA (1998)Carbon to nitrogen ratio, carbon concentration, and amino acid composition of growth media influence conidiation of Helmithosporium solani.Mycologia 98: 406-413. Evans RC, Black CL (1981) Interaction between nitrogen sources and xylose affecting growth, conidiation, and polyphenoloxidase activity in Bipolaris maydis Race T. Canadian Journal of Botany 59: 2102-2107. Gao L, Liu X (2010) Nutritional requirements of mycelial growth and sporulation of several biocontrol fungi in submerged and on solid culture. Microbiology 79(5): 612-619. Gouli V, Provost C, Gouli S, Parker BL, Skinner M (2103) Productivity of different species of entomopathogenic fungi based on one type of technology. Journal of Agricultural Technology 9(3): 571-580. Jenkins NE, Heviefo G, Langewald J, Cherry AJ, and Lomer CJ (1998) Development of mass production technology for aerial conidia for use as mycopesticides. Biocontrol News and Information 19(1): 21-31. Jenkins NE, Goettel MS (1997) Methods for mass production of microbial control agents of grasshoppers and locusts. Memoirs of the Entomological Society of Canada171: 37-48. Kamp AM, Bidochka MJ (2002) Conidium production by insect pathogenic fungi on commercially available agar. Letters in Applied Microbiology 35: 74-77. Kassa A, Brownbridge M, Parker BL, Skinner M, Gouli V, Gouli S, Gou M, Lee F, Hata T (2008)Whey for mass production of Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae. MycologicalResearch 112(5): 583-591. Kim JS, Skinner M, Parker BL (2010)Influence of whey permeate and millet as substrates on thermotolerance of Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae conidia during storage. Biocontrol Science and Technology 20(8): 859-863. Kim SW, Hwang HJ, Xu CP, Na YS, Song SK, Yun JW (2002) Influence of nutritional conditions on the mycelial growth and exopolysaccharide production in Paecilomyces sinclairii. Letters in Applied Microbiology 34: 389-393. Mar TT, Lumyong S (2012)Conidial production of entomopathogenic fungi in solid state fermentation. KKU  Research Journal 17(5): 762-768. Pandy AK, Kanaujia (2005) Effect of different grain media on sporulation, germination and virulence of Beauveria bassiana against Spodoptera litura fabricius larvae. Journal of Biological Control 19(2): 129-133. Prakash BG, VS, Padmaja V, Kiran SRR (2008) Statistical optimization of process variables for the large-scale production of Metarhizium anisopliae conidiospores in solid-state fermentation. Bioresource Technology 99: 1530-1537. Prasad GG (2013) Evaluation of different substrates for mass multiplication of Beauveria bassiana (Balsamo) Vuillemin. Agricultural Science Digest 33(4): 321-323. Robl D, Sung LB, Novakovich JH, Marangoni PRD, Zawadneak MAC, Dalzoto PR, Gabardo J, Pimentel IC (2009)Spore production in Paecilomyces lilacinus (Thom.) Samson strains on agro-industrial residues. Brazilian Journal of Microbiology 40: 296-300. Samsinakova A, Kalalov S, Vlcek V, Kybal J (1981) Mass production Beauveria bassiana for regulation of Leptinotarsa decemlineata populations. Journal of Invertebrate Pathology 38(2): 168-174. Seema Y, Neeraj T, Krishan K (2013) Mass production of entomopathogenes Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae using rice as a substrate by diphasic liquid-solid fermentation technique. International Journal of Advanced Biological Research 3(3): 331-335. Smith RJ, Grula EA (1981) Nutritional requirmens for conidial germination and hyphal growth of Beauveria bassiana. Journal of Invertebrate Pathology 37: 222-230. Zimmermann G (2007) Review on safety of the entomopathogenic fungi Beauveria bassiana and Beauveria brongniartii. Biocontrol Science and Technology 17(5): 553-596._||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2017.63359 کنترل بیولوژیک بیمایهای گیاهی فعالیت ضد قارچی اسانس‌ گیاهان دارویی در برابر قارچ Mycogone perniciosa، عامل بیماری حباب تر و اثر آن‌ها بر قارچ دکمه‌ای بهنامیان مهدی استادیار، گروه علوم باغبانی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل نجفی زیور دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، گروه علوم باغبانی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل داوری مهدی دانشیار، گروه گیاه پزشکی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل دژستان سارا استادیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل 22 05 2017 6 1 111 119 06 09 2016 28 10 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2017 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_63359.html

یکی از بیماری­های رایج قارچ دکمه­ای در ایران، بیماری حباب تر است که توسط قارچ Mycogone perniciosa ایجاد می­شود. در مطالعه حاضر، به منظور توسعه کنترل بیولوژیک و تولید محصول سالم، اثر ضدقارچی اسانس برخی گیاهان دارویی معطر به عنوان جایگزینی برای قارچ‌کش­های شیمیایی مورد بررسی قرار گرفت. برای این منظور، قارچ M. perniciosa از قارچ دکمه­ای سفید (Agaricus bisporus cv. Sylvan 737) مبتلا به بیماری حباب تر جداسازی شد. سپس به منظور ارزیابی امکان کنترل بیولوژیک قارچ عامل بیماری، اثر شش اسانس گیاه سیر، پونه، پونه کوهی، اسطوخودوس، آویشن کوهی و اکالیپتوس در برابر M. perniciosa و اثر آنها روی میسلیوم قارچ دکمه­ای سفید در غلظت­های 100، 500، 1000، 1500 و 2000 میکرولیتر در لیتر مورد بررسی قرار گرفت. طبق نتایج، آویشن کوهی و پونه کوهی بسیار سمی بوده و حداقل غلظت بازدارندگی (MIC) و قارچ­کشی (MFC) آنها  روی M. perniciosa به ترتیب 300 و 500 میکرولیتر بر لیتر بود. اسانس سیر، اثر قارچ­کشی خود را روی M. perniciosa (1000 میکرولیتر بر لیتر) در غلظتی پایین­تر از قارچ دکمه­ای (1400 میکرولیتر بر لیتر) نشان داد. به­طور کلی، اسانس­های سیر و اسطوخودوس به ترتیب به ­عنوان مؤثرترین و ضعیف‌ترین اسانس‌ها‌‌ علیه M. pernociosa شناخته شدند. آنالیز GC-MS نیز نشان داد که به ترتیب Trisulfide, di-2-propenyl، Piperitenone oxide، Thymol، 1,8-Cineole، Thymol و Spathulenol اجزای اصلی شش اسانس فوق می‌باشند. با توجه به نتایج و با درنظرگرفتن ذائقه مصرف‌کنندگان به نظر می­رسد اسانس سیر می­تواند پس از تحقیقات تکمیلی به عنوان یک جایگزین مناسب ترکیبات شیمیایی برای کنترل بیماری حباب تر مد نظر قرار گیرد.

 پونه حباب تر سیر قارچ خوراکی کنترل بیولوژیک Ahmad A, Khan A, Akhtar F, Yousuf S, Xess I, Khan LA, Manzoor N (2011) Fungicidal activity of thymol and carvacrol by disrupting ergosterol biosynthesis and membrane integrity against Candida. European Journal of Clinical Microbiology and Infectious Diseases 30: 41-50. Amiri H (2012) Essential oils composition and antioxidant properties of three Thymus species. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine, Article ID 728065, 8 pages doi:10.1155/2012/728065. Bakkali F, Averbeck S, Averbeck D, Idaomar M (2008) Biological effects of essential oils – a review. Food and Chemical Toxicology 46: 446-475. Bozovic M, Pirolli A, Ragno R (2015) Mentha suaveolens Ehrh. (Lamiaceae) essential oil and its main constituent piperitenone oxide: biological activities and chemistry. Molecules 20: 8605-8633. Calvo-Gomez O, Morales-Lopez J, Lopez MG (2004) Solid-phase microextraction-gas chromatographic-mass spectrometric analysis of garlic oil obtained by hydrodistillation. Journal of Chromatography A 1036: 91-93. Cantore PL, Iacobellis NS, De Marco A, Capasso F, Senatore F (2004) Antibacterial activity of Coriandrum sativum L. and Foeniculum vulgare Miller var. vulgare (Miller) essential oils. Journal of Agricultural and Food Chemistry 52: 7862-7866. Chen S, Oh SR, Phung S, Hur G, Ye JJ, Kwok SL, Shrode GE, Belury M, Adams LS, Williams D (2006) Anti-aromatase activity of phytochemicals in white button mushrooms (Agaricus bisporus). Cancer Research 66: 12026-12034. Darvishi E, Omidi M, Bushehri AA, Golshani A, Smith ML (2013) Thymol antifungal mode of action involves telomerase inhibition. Medical Mycology 51: 826-834. D’auria FD, Tecca M, Strippoli V, Salvatore G, Battinelli L, Mazzanti G (2005) Antifungal activity of Lavandula angustifolia essential oil against Candida albicans yeast and mycelial form. Medical Mycology 43: 391-396. Davari M, Ezazi R (2016)Study on the effects of four medicinal plant essential oils and two Trichoderma species on biocontrol of grapefruit rot fungi. Biological Control of Pests and Plant Diseases 5: 1-12. Delaquis PJ, Stanich K, Girard B, Mazza G (2002) Antimicrobial activity of individual and mixed fractions of dill, cilantro, coriander and eucalyptus essential oils. International Journal of Food Microbiology 74: 101-109. Elaissi A, Rouis Z, Ben Salem NA, Mabrouk S, Ben Salem Y, Bel Haj Salah K, Aouni M, Farhat F, Chemli R, Harzallah-Skhiri F, Larbi Khouja M (2012) Chemical composition of 8 Eucalyptus species' essential oils and the evaluation of their antibacterial, antifungal and antiviral activities. BMC Complementary and Alternative Medicine 12: 81. Elshafie HS, Mancini E, Sakr S, De Martino L, Mattia CA, De Feo V, Camele I (2015) Antifungal activity of some constituents of Origanum vulgare L. essential oil against postharvest disease of peach fruit. Journal of Medicinal Food 18: 929-934. Farzaneh M, Kiani H, Sharifi R, Reisid M, Hadiana J (2015) Chemical composition and antifungal effects of three species of Satureja (S. hortensis, S. spicigera, and S. khuzistanica) essential oils on the main pathogens of strawberry fruit. Postharvest Biology and Technology 109: 145-151. Figueiredo AC, Barroso JG, Pedro LG, Scheffer JJC (2008) Factors affecting secondary metabolite production in plants: volatile components and essential oils. Flavour and Fragrance Journal 23: 213-226. Fournomiti M, Kimbaris A, Mantzourani I, Plessas S, Theodoridou I, Papaemmanouil V, Kapsiotis I, Panopoulou M, Stavropoulou E, Bezirtzoglou EE, Alexopoulos A (2015) Antimicrobial activity of essential oils of cultivated oregano (Origanum vulgare), sage (Salvia officinalis), and thyme (Thymus vulgaris) against clinical isolates of Escherichia coli, Klebsiella oxytoca, and Klebsiella pneumonia. Microbial Ecology in Health & Disease 26: 23289. http://dx.doi.org/10.3402/mehd.v26.23289. Gavanji S, Mohammadi E, Larki B, Bakhtari A (2014) Antimicrobial and cytotoxic evaluation of some herbal essential oils in comparison with common antibiotics in bioassay condition. Integrative Medicine Research 3: 142-152. Glamoclija J, Sokovic M, Grubisic D, Vukojevic J, Milinekovic I, Ristic M (2009) Antifungal activity of Critmum maritimum essential oil and its components against mushroom pathogen Mycogone perniciosa. Chemistry of Natural Compounds 45: 96-97. Gulluce M, Sahin F, Sokmen M, Ozer H, Daferera D, Sokmen A (2007) Antimicrobial and antioxidant properties of the essential oils and methanol extract from Mentha longifolia L. ssp. longifolia. Food Chemistry 103: 1449-1456. Hussain AI, Anwar F, Nigam PS, Ashraf M, Gilani AH (2010) Seasonal variation in content, chemical composition and antimicrobial and cytotoxic activities of essential oils from four Mentha species. Journal of the Science of Food and Agriculture 90: 1827-1836. Iqbal T, Hussain AI, Chatha SAS, Naqvi SAR, Bokhari TH (2013) Antioxidant activity and volatile and phenolic profiles of essential oil and different extracts of wild mint (Mentha longifolia) from the Pakistani flora. Journal of Analytical Methods in Chemistry, Article ID 536490, 6 pages, http://dx.doi.org/10.1155/2013/536490. Kim JW, Kim YS, Kytung KH (2004) Inhibitory activity of essential oils of garlic and onion against bacteria and yeasts. Journal of Food Protection 67: 499-504. Kordali S, Cakir A, Ozer H, Cakmakci R, Kesdek M, Mete E (2008) Antifungal, phytotoxic and insecticidal properties of essential oil isolated from Turkish Origanum acutidens and its three components, carvacrol, thymol and p-cymene. Bioresource Technology 99: 8788-8795. Küçükbay FZ, Kuyumcu E, Çelen S, Azaz AD, Arabaci T (2014) Chemical composition of the essential oils of three Thymus taxa from Turkey with antimicrobial and antioxidant activities. Records of Natural Products 8: 110-120. Kunicka-Styczyn´ ska A, Sikora M, Kalemba D (2009) Antimicrobial activity of lavender, tea tree and lemon oils in cosmetic preservative systems. Journal of Applied Microbiology 107: 1903-1911. Li WR, Shi QS, Dai HQ, Liang Q, Xie XB, Huang XM, Zhao GZ, Zhang LX (2016) Antifungal activity, kinetics and molecular mechanism of action of garlic oil against Candida albicans. Scientific Reports 6: 22805-22813. Maffei M (1988) A chemotype of Mentha longifolia (L.) Hudson particularly rich in piperitenone oxide. Flavour and Fragrance Journal 3: 23-26. Mancini E,Cameleb I,Elshafie HS,De Martino L,Pellegrino C,Grulova D,De Feo V (2014) Chemical composition and biological activity of the essential oil of Origanum vulgare ssp. hirtum from different areas in the southern Apennines (Italy). Chemistry & Biodiversity 11: 639-651. Marchese A, Orhan IE, Daglia M, Barbieri R, Lorenzo AD, Nabavi SF, Gortzi O, Izadi M, Nabavi SM (2016) Antibacterial and antifungal activities of thymol: a brief review of the literature. Food Chemistry, doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.foodchem.2016.04.111 Marino M, Bersani C, Comi G (2001) Impedance measurements to study the antimicrobial activity of essential oils from Lamiaceae and Compositae. International Journal of Food Microbiology 67: 187-195. Mazooji A, Salimpour F, Danaei M, Akhoondi Darzikolaei S, Shirmohammadi K (2012) Comparative study of the essential oil chemical composition of Thymus kotschyanus Boiss. & Hohen var. kotschyanus from Iran. Annals of Biological Research 3: 1443-1451. Mnayer D, Fabiano-Tixier AS, Petitcolas E, Hamieh T, Nehme N, Ferrant C, Fernandez X, Chemat F (2014) Chemical composition, antibacterial and antioxidant activities of six essentials oils from the Alliaceae family. Molecules 19: 20034-20053. Moghaddam M, Farhadi N (2015) Influence of environmental and genetic factors on resin yield, essential oil content and chemical composition of Ferula assa-foetida L. populations. Journal of Applied Research on Medicinal and Aromatic Plants 2: 69-76. Mohammadi Goltapeh E, Pourjam E (2005) Principles of mushroom cultivation. Tarbiat Modares University Press, 626p. In Persian. Mota KSL, Pereira FO, Oliveira WA, Lima IO, Lima EO (2012) Antifungal activity of Thymus vulgaris L. essential oil and its constituent phytochemicals against Rhizopus oryzae: interaction with ergosterol. Molecules 17: 14418-33. Pina-Vaz C, Gonçalves Rodriguez A, Pinto E, Costa-de-Oliveira S, Tavares C, Salgueiro L,Cavaleiro C, Gonçalves MJ, Martinez-de-Oliveira J (2004) Antifungal activity of Thymus (oils and their major compounds). Journal of the European Academy of Dermatology and Venereology 18: 73-78. Pinto E, Goncalves MJ, Hrimpeng K, Pinto J, Vaz S, Vale-Silva LA, Cavaleiro C, Salgueiro L (2013) Antifungal activity of the essential oil of Thymus villosus subsp. lusitanicus against Candida, Cryptococcus, Aspergillus and dermatophyte species. Industrial Crops and Products 51: 93-99. Rao A, Zhang Y, Muend S, Rao R (2010) Mechanism of antifungal activity of terpenoid phenols resembles calcium stress and inhibition of the TOR pathway. Antimicrobial Agents and Chemotherapy 54: 5062-5069. 10.1128/AAC.01050-10. Russo M, Galletti GC, Bocchini P, Carnacini A (1998) Essential oil chemical composition of wild populations of Italian oregano spice (Origanum vulgare ssp. hirtum (Link) Ietswaart): a preliminary evaluation of their use in chemotaxonomy by cluster analysis. 1. Inflorescences. Journal of Agricultural and Food Chemistry 46: 3741-3746. Sánchez MA, Turina AV, García DA, Nolan MV, Perillo MA (2004) Surface activity of thymol: implications for an eventual pharmacological activity. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces 34: 77-86. Shahriar A (2013) Identification of pathogenic fungi in mushroom production units in Ardabil province. M.Sc Thesis, University of Mohaghegh Ardabili, Ardabil, Iran.  Sharma MV, Sagar A, Joshi M (2015) Study on antibacterial activity of Agaricus bisporus (Lang.) Imbach. International Journal of Current Microbiology and Applied Science 4: 553-558. Sokovic M, Van Griensven LJLD (2006) Antimicrobial activity of essential oils and their components against the three major pathogens of the cultivated button mushroom, Agaricus bisporus. European Journal of Plant Pathology 116: 211-224. Tanovic B, Potocnik I, Stanisavljevic B, Dordevic M, Rekanovic E (2006) Response of Verticillium fungicola var. fungicola, Mycogone perniciosa and Cladobotyum sp. mushroom pathogens to some essential oils. Pesticides and Phytomedicine 21: 231-237. Tsao S, Yin M (2001) In vitro antimicrobial activity of four diallyl sulphides occurring naturally in garlic and Chinese leek oils. Journal of Medical Microbiology 50: 646-649. Yang D, Michel L, Chaumont JP, Millet-Clerc J (2000) Use of caryophyllene oxide as an antifungal agent in an in vitro experimental model of onychomycosis. Mycopathologia 148: 79-82. Yazgi M, Awad D, Jreikous B (2015) Screening of the antifungal activity of plant Mentha longifolia crude extracts against two fungi Alternaria citri and Fusarium moniliforme. Journal of Entomology and Zoology Studies 3: 359-364. Zuzarte M, Goncalves MJ, Cavaleiro C, Cruz MT, Benzarti A, Marongiu B, Maxia A, Piras A, Salgueiro L (2013) Antifungal and anti-inflammatory potential of Lavandula stoechas and Thymus herba-barona essential oils. Industrial Crops and Products 44: 97-103._||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2017.63360 کنترل بیولوژیک بیمایهای گیاهی اثر بازدارندگی پنج جدایه Trichoderma روی رشد قارچ Fusarium oxysporum f.sp. dianthi در شرایط آزمایشگاهی کرماجانی زینب دانشجوی کارشناسی ارشد رشته بیماری‌شناسی گیاهی، اگروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی دانشگاه شهرکرد جمالی زواره عبدالحسین استادیار، گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی دانشگاه شهرکرد فدایی تهرانی علی اکبر دانشیار،گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی دانشگاه شهرکرد 22 05 2017 6 1 121 125 13 03 2016 31 07 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2017 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_63360.html

میخک (Dianthus caryophyllus L.) یکی از چهار گل شاخه بریده عمده صادراتی ایران است. بیماری پژمردگی میخک در اثر Fusarium oxysporum f.sp. dianthi از مخرب‌ترین بیماری‌های این گیاه در بیشتر مناطق پرورش آن در دنیا به‌حساب می‌آید. برای بررسی امکان به‌کارگیری مبارزه بیولوژیک، اثر بازدارندگی از رشد پنج جدایه تریکودرما شامل سه جدایه Trichoderma harzianum تهیه شده از کرج (Th1)، شهرکرد (Th2) و همدان (Th3)، یک جدایه T. virens (Tv) و یک جدایه T. atroviride (Ta) هر دو از همدان، روی قارچ F. oxysporum f.sp. dianthi جدا شده از میخک محلات در شرایط آزمایشگاهی مورد بررسی قرار گرفت. در آزمایش کشت متقابل بیشترین بازدارندگی از رشد پرگنه فوزاریوم تحت اثر جدایه Th3 و کمترین آن توسطTa  مشاهده شد. عصاره کشت جدایه Th1 بیشترین بازدارندگی را از رشد پرگنه بیمارگر داشتند در حالی که عصاره کشت جدایه Th3 کمترین اثر را بر رشد نشان داد. در آزمایش اثر مواد فرّار آنتاگونیست، بیشترین ممانعت از رشد پرگنه فوزاریوم مربوط به جدایه Ta و کمترین آن مربوط به جدایه Th3 بوده است.

 پژمردگی فوزاریومی کنترل بیولوژیک میخک محلات Ashrafizadeh A, Etebarian HR, Zamanizadeh HR (2005) Evaluation of Trichoderma isolates for biocontrol of Fusarium wilt of melon. Iranian Journal of Plant Pathology 41: 39-57. (in Persian) Ben-Yephet Y, Shtienberg D (1997) Effect of the host, the pathogen, the environment and their intractions, on Fusarium wilt of camation. Phytoparasitica 25: 207-216. Dennis C, Webster J (1971) Antagonistic properties of species group of Trichoderma I. prodaction of nonvolatile antibiotics. Transactions of the British Mycological Society 57: 25-39. Elad Y, Chet I, Henis Y (1982) Degradation of plant pathogenic fungi by Trichoderma harzianum. Canadian Journal of Microbiology 28: 719-725. Etebarian HR (1996) Occurrence of Fusarium wilt of camation in Varamin area. Iranian Journal of Plant Pathology 32(3-4): 223-232. (in Persian) Kudsen GR, Eschen DJ, Danduranad LM, Bin L (1991) Potential for biocontrol of Sclerotinia sclerotiorum through colonization of sclerotia by Trichoderma harzianum. Plant Disease 75: 466-470. Mirabolfathy M (2000) Survey on the soilborne fungal diseases of ornamental plants in Iran. In: Proceeding of the 2nd Iranian Congress or Horticulture, Karaj- Iran. p 203. (in Persian) Nelson PE, Toussoun TA, Marasas WFO (1983) Fusarium species: an illustrated manual for identification. Pennsylvania State Universy, Press University Park 193 pp. Nash SM, Snyder WC (1962) Quantitative estimations by plate counts of propagules of the bean root rot Fusarium in field soils. Phytopathology 52: 567-572. Peyghamy E (1991) Evaluation of Antagonistic effect of Trichoderma harzianum in biological control of causal agent of cucumber Fusarium wilt. Agricultural Knowledge 2(3): 100-123. (in Persian)_||_