پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2015.54510 کنترل بیولوژیک آفات برهم‌کنش بین سطوح مختلف کوددهی نیتروژن در گیاه کلزا با شتة ‌خردل (Lipaphis erysimi Kalt.) و پشة شکارگر (Aphidoletes aphidimyza Rondani) برهم‌کنش بین سطوح مختلف کوددهی نیتروژن در گیاه کلزا با شتة ‌خردل (Lipaphis erysimi Kalt.) و پشة شکارگر (Aphidoletes aphidimyza Rondani) فلاح پور فرنوش دکتری بوم شناسی زراعی، گروه زراعت دانشکدة کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد قربانی رضا استاد گروه زراعت دانشکدة کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد نصیری محلاتی مهدی استاد گروه زراعت دانشکدة کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد حسینی مجتبی استادیار گروه گیاه‌پزشکی دانشکدة کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد 21 03 2015 4 1 1 12 20 04 2015 27 07 2015 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2015 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_54510.html

کیفیت گیاه میزبان نه تنها بر آفات گیاه‌خوار، بلکه به‌صورت غیرمستقیم می‌تواند بر توانایی زیستی دشمنان طبیعی آن‌ها نیز اثر بگذارد. این پژوهش به‌منظور بررسی اثر مقادیر مختلف کوددهی نیتروژن در گیاه کلزا (Brassica napus L.) بر پارامترهای جدول زندگی پشة شکارگر (Aphidoletes aphidimyza Rondani; Diptera: Cecidomyiidae) در تغذیه از شتة خردل (Lipaphis erysimi Kalt.; Hemiptera: Aphididae) تحت شرایط کنترل‌شدة دما (روز 2±25 و شب 2±19درجة سلسیوس) و رطوبت (10±60 درصد) انجام شد. برای ایجاد کیفیت‌های مختلف شتة خردل، ابتدا شته‌های خردل روی گیاهان کلزا، تحت چهار تیمار کودی صفر، 055/0، 11/0 و 165/0 گرم نیتروژن بر کیلوگرم خاک پرورش یافتند و سپس، مورد تغذیۀ پشة شکارگر قرار گرفتند. دورة نشو و نمای مراحل مختلف رشدی پشة شکارگر به‌صورت روزانه ثبت شد و برآورد پارامترهای جدول زندگی با استفاده از رویة جدول زندگی دوجنسی انجام شد. نتایج نشان داد که افزایش کوددهی نیتروژن در گیاه کلزا، دورة رشد و نمو لارو و شفیرة شکارگر را به‌طور معنی‌داری کاهش داد و به افزایش معنی‌دار دورة تخم‌ریزی حشرات ماده منجر شد. همچنین، با افزایش کوددهی نرخ انتقال نیز کاهش یافت. در مجموع سطوح میانی و بالای کوددهی نیتروژن به بهبود توانایی زیستی پشة شکارگر منجر شدند. با توجه به آنکه بیشترین نرخ خالص تولید مثل (54/31 تخم به ازای هر فرد) و نرخ ذاتی افزایش جمعیت (163/0 بر روز) نیز با اختلاف معنی‌دار در سطح میانی کوددهی نیتروژن (11/0 گرم نیتروژن در کیلوگرم خاک) مشاهده شدند، می‌توان این سطح را به‌عنوان سطح مطلوب پشة شکارگر معرفی کرد.

 سطح غذایی کیفیت شکار نرخ ذاتی افزایش جمعیت Cecidomyiidae Ahmad G, Jan A, Arif M, Jan MT, Khattak RA (2007) Influence of nitrogen and sulfur fertilization on quality of canola (Brassica napus L.) under rainfed conditions. Journal of Zhejiang University Science B 8(10): 731-737. Alotaibi S (2008) Mass production and utilization of the predatory midge, Aphidoletes aphidimyza Rondani for controlling aphids. Global Journal of Biotechnology and Biochemistry 3 (1): 1- 7. Aqueel MA, Collins CM, Raza AM, Ahmad S, Tariq M, Leather SR (2014) Effect of plant nutrition on aphid size, prey consumption, and life history characteristics of green lacewing. Insect Science 21: 74-82. Aslam M, Razaq M, Maalik A (2004) Effect of nitrogen fertilizer application on population of mustard aphid (Lipaphis erysimi Kalt.) on different canola varieties. Pakistan Journal of Entomology 26(1): 115-119. Bentz JA, Reeves J, Barbosa P, Francis B (1996) The effect of nitrogen fertilizer applied to Euphorbia pulcherrima on the parasitization of Bemisia argentifolii by the parasitoid Encarsia formosa.  Entomologia Experimentalis et Applicata 78: 105- 110. Bodo SG, Rodriguez SM, Folcia M (2002) Aphids (Homoptera: Aphididae) and predatory ladybeetles (Coleoptera: Coccinellidae) abundance variation in a barley crop with different fertilization practices. JDESIA (Chile) 20 (1): 35- 42. Chen XJ, Zhu ZJ, Ni XL, Qian QQ (2006) Effect of nitrogen and sulfur supply on glucosinolates in Brassica campestris ssp. Chinensis. Agricultural Science of China 5(8): 603- 608. Chi H, Liu H (1985) Two new methods for the study of insect population ecology. Bulletin of the Institute of Zoology Academia Sinica 24: 225-240. Chi H (1988) Life-table analysis incorporating both sexes and variable development rates among individuals. Environmental Entomology 17: 26-34. Chi H (2014) TWOSEX-MSChart: a computer program for the age-stage, two-sex life table analysis. (http:/140.120.197.173/Ecology/) (accessed 1 April 2015). Daugherty MP (2011) Host plant quality, spatial heterogeneity, and the stability of mite predator–prey dynamics. Experimental and Applied Acarology 53: 311-322. Denno RF, Gratton C, Dobel H, Finke DL (2003) Predation risk affects relative strength of top-down and bottom-up impacts on insect herbivores. Ecology 84 (4): 1032-1044. Efron B, Tibshirani RJ (1993) An introduction to the bootstrap. Chapman &Hall, New York, NY. Fallahpour F, Ghorbani R, Nassiri Mahallati M, Hosseini M (2015) Demographic parameters of Lipaphis erysimi on canola cultivars under different nitrogen fertilization regimes. Journal of Agricultural Science and Technology 17: 35-47. Farhadi R, Allahyari H, Chi H (2011) Life table and predation capacity of Hippodamia variegata (Coleoptera: Coccinellidae) feeding on Aphis fabae (Hemiptera: Aphididae). Biological Control 59: 83- 89. Fox LR, Kester KM, Eisenbach J (1996) Direct and indirect responses of parasitoids to plants: sex ratio, plant quality and herbivore diet breadth. Entomologia Experimenrtalis et Applicata 80: 289-292. Fox LR, Letourneau DK, Eisenbach J, Van Nouhuys S (1990) Parasitism rates and sex ratios of a parasitoid wasp: Effects of herbivore and plant quality. Oecologia 83: 414-419. Gash AFJ (2012) Wheat nitrogen fertilization effects on the performance of the cereal aphid Metopolophium dirhodum. Agronomy Journal 2: 1-13. Haley S, Hogue E (1990) Ground cover influence on apple aphid, Aphis pomi DeGeer (Homoptera: Aphididae), and its predators in a young apple orchard. Crop Protection 9 (3): 225-230. Havelka J, Zemek R (1999) Intraspecific variability of aphidophagous gall midge Aphidoletes aphidimyza (Rondani) (Dip., Cecidomyiidae) and its importance for biological control of aphids. Journal of Applied Entomology 105: 280-288. Havelka J, Zemek R (1999) Life table parameters and oviposition dynamics of various populations of the predacious gall-midge Aphidoletes aphidimyza. Entomologia Experimentalis et Applicata 91: 481-484. Hindayana D, Meyhofer R, Scholz D, Poehling HM (2001) Intraguild predation among the hoverfly Episyrphus balteatus de Geer (Diptera: Syrphidae) and other aphidophagous predators. Biological Control 20: 236-246. Hocking PJ, Randall PJ, DeMarco D (1997) The response of dryland canola to nitrogen fertilizer: partitioning and mobilization of dry matter and nitrogen, and nitrogen effects on yield components. Field Crop Research 54: 201-220. Hosseini M, Ashouri A, Enkegaard A, Goldansaz SH, Nassiri Mahallati M, Hosseininaveh V (2010) Performance and population growth rate of cotton aphid, and associated yield losses in cucumber, under different nitrogen fertilization regimes. International Journal of Pest Management 56(2): 127-135. Huang YB, Chi H (2012) Assessing the application of the Jackknife and Bootstrap techniques to the estimation of the variability of the net reproductive rate and gross reproductive rate: a case study in Bactrocera cucurbitae (Coquillett) (Diptera: Tephritidae). Turkish Journal of Agriculture and Forestry 61: 37- 45. Jandricic SE, Wraight SP, Gillespie DR, Sanderson JP (2013) Oviposition behavior of the biological control agent Aphidoletes aphidimyza (Diptera: Cecidomyiidae) in environments with multiple pest aphid species (Hemiptera: Aphididae). Biological Control 65 (2): 235-245. Jansson J (2003) The influence of plant fertilization regime on plant-aphid-parasitoid interactions. PhD dissertation, Swedish University of Agricultural Sciences, Uppsala. Kagata H, Nakamura M, Ohgushi T (2005) Bottom-up cascade in a tri-trophic system: different impacts of host-plant regeneration on performance of a willow leaf beetle and its natural enemy. Ecological Entomology 30: 58-62. Kagata H, Ohgushi T (2007) Carbon–nitrogen stoichiometry in the tritrophic food chain willow, leaf beetle, and predatory ladybird beetle. Ecological Research 22: 671- 677. Kaneshiro LN, Johnson MW (1996) Tritrophic effects of leaf nitrogen on Liriomyza trifolii (Burgess) and an associated parasitoid Chrysocharis oscinidis (Ashmead) on bean. Biological Control 6: 186-192. Khajehzadeh Y, Hasany Moghadam M, Baghery S, Keyhanian A (2009) Determination of economic injury level of Lipaphis erysimi (Hemiptera: Aphididae) on canola var. Hayola 401 in Khuzestan. Journal of Entomological Society of Iran 29 (1): 23-36. (In Persian) Khajehzadeh Y, Malkeshi SH, Keyhanian AK (2010) Population fluctuation of canola aphids, biology of turnip aphid, Lipaphis erysimi Kalt.and efficiency of its natural enemies in canola fields of Khuzestan. Iranian Journal of Plant Protection Science 41: 165-178. (In Persian) Madahi K, Sahragard A, Hosseini R (2013) Influence of Aphis gossypii Glover (Hemiptera: Aphididae) density on life table parameters of Aphidoletes aphidimyza Rondani (Diptera: Cecidomyiidae) under laboratory conditions. Journal of Crop Protection 2 (3): 355-368. Malais M, Ravensberg WJ (1992) Knowing and recognizing the biology of glasshouse pests and their natural enemies, In: Koppert BV, Berkel en Rodenrijs, Koppert Biological Systems, The Netherlands. Malkeshi H, Ahmadi M, Saqaei AM (2004) Survey of cabbage aphid Brevicoryne brassicae (L), population fluctuation and its dominant natural enemies. FAO web. http://agris.fao.org/agris-search/search.do?recordID=IR2010000440. (Accessed 15 October 2014) Nadarajan L, Jayaraj S (1975) Influence of various hosts on development and reproduction of pupal parasite, Tetrastichus howardi. Current Science 44: 458- 460. Nevo E, Coll M (2001) Effect of nitrogen fertilization on Aphis gossypii (Homoptera: Aphididae): variation in size, color, and reproduction. Journal of Economic Entomology 94: 27-32. Price PW, Bouton CE, Gross P, McPheron BAN, Thompson JN, Weis AE (1980) Interactions among three trophic levels: influence of plants on interactions between insect herbivores and natural enemies. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics 11: 41-65. Rathke GW, Behrens T, Diepenbrock W (2006) Integrated nitrogen management strategies to improve seed yield, oil content and nitrogen efficiency of winter oilseed rape (Brassica napus L.). Agriculture, Ecosystems and Environment 117: 80-108. Ricklefs RE, Miller GL (1999) Ecology, 4th ed. Freeman WH, NewYork. Roy M, Brodeur J, Cloutier C (2003) Effect of temperature on intrinsic rates of natural increase of a coccinellid and its spider mite prey. Biocontrol 48: 57-72. Sarfraz M, Dosdall LM, Keddie BA (2009) Host plant nutritional quality affects the performance of the parasitoid Diadegma insulare. Biological Control 51: 34- 41. Sokal RR, Rohlf FJ (1995) Biometry, 3rd ed. Freeman WH, San Francisco, CA. Southwood TRE, Henderson PA (2000) Ecological methods, 3rd ed. Blackwell, Oxford, United Kingdom. Svečnjak Z, Rengel Z (2006) Canola cultivars differ in nitrogen utilization efficiency at vegetative stage. Field Crops Research 97: 221-226. Thakral SK, Singh BP, Faroda AS, Gupta SK (1996) Effect of irrigation and fertility levels on the oil yield and quality of Brassica species. Annals of Agricultural Research 17(4): 416-418. Veromann E, Toome M, Kännaste A, Kaasik R, Copolovici L, Flink J, Kovács G, Narits L, Luik A, Niinemets Ü (2013) Effects of nitrogen fertilization on insect pests, their parasitoids, plant diseases and volatile organic compounds in Brassica napus. Crop Protection 43: 79- 88. Watanabe H, Katayama N, Yano E, Sugiyama R, Nishikawa S, Endou T, Watanabe K, Takabayashi J, Ozawa R (2014) Effects of aphid honeydew sugars on the longevity and fecundity of the aphidophagous gall midge Aphidoletes aphidimyza. Biological Control 78: 55- 60. Xie M, Cheng HK, Qiu WL (2000) The efficiency evaluation of the mass propagation system of Aphidoletes aphidimyza by life table. Acta Entomological Sinica 43: 151-155. Yamane M, Yano E, Matsumoto Y, Yoshioka S, Kawai T, Toyonishi H, Nakamura T (2012) Effect of photoperiod and temperature on the induction of diapause in a Japanese strain of Aphidoletes aphidimyza (Diptera: Cecidomyiidae). Applied Entomology and Zoology 47:17-26. Yukawa J, Yamaguchi D, Mizota K, Setokuchi O (1998) Distribution and host range of an aphidophagous species of Cecidomyiidae, Aphidoletes aphidimyza (Diptera), in Japan. Applied Entomology and Zoology 33:185-193. Zaller JG, Moser D, Drapela T, Schmöger C, Frank T (2009) Parasitism of stem weevils and pollen beetles in winter oilseed rape is differentially affected by crop management and landscape characteristics. Biocontrol 54:505-514. Zarghami S, Allahyari H, Bagheri MR, Saboori A (2010) Effect of nitrogen fertilization on life table parameters and population growth of Brevicoryne brassicae. Bulletin of Insectology 63 (1): 39-43. Zehnder C, Hunter M (2008) Effects of nitrogen deposition on the interaction between an aphid and its host plant. Ecological Entomology 33: 24-30.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2015.54511 کنترل بیولوژیک بیمایهای گیاهی تأثیر احساس برخی الگو‌های مولکولی مرتبط با میکروب شناخته‌شده در افزایش مقاومت گیاه آرابیدوپسیس تأثیر احساس برخی الگو‌های مولکولی مرتبط با میکروب شناخته‌شده در افزایش مقاومت گیاه آرابیدوپسیس فلاح زاده ممقانی وحید استادیار گروه گیاه‌پزشکی، دانشگاه شهید مدنی آذربایجان، تبریز، ایران احمدزاده مسعود استاد گروه گیاه‌پزشکی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران بهبودی کیوان دانشیار گروه گیاه‌پزشکی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران 21 03 2015 4 1 13 22 08 04 2015 28 07 2015 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2015 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_54511.html

الگوی‌های مولکولی مرتبط با میکروب (Microbe-associated molecular patterns-MAMPs) نقش کلیدی در فعال‌سازی پاسخ‌های ایمنی ذاتی (Innate immunity) در جانوران و به‌صورت مشابهی، به‌عنوان انگیزنده‌های (Elicitors) پاسخ‌های دفاعی در گیاهان دارند. با وجود این، بررسی‌های زیادی دربارة اهمیت واقعی آن‌ها در مقاومت گیاه نسبت به بیمارگرها وجود ندارد. در این تحقیق اثر مشتقات فاکتور نسخه‌برداری Ef-Tu و فلاژلین به‌عنوان MAMPهای شناخته‌شده، در افزایش مقاومت گیاه آرابیدوپسیس نسبت به بیمارگرهای مهم قارچی و باکتریایی بررسی شد. پیش‌تیمار گیاهان Col-0 با هر دوMAMP  به‌صورت معنی‌داری مقاومت گیاهان نسبت به قارچ‌های Botrytis cinerea و Alternaria brassicicola را افزایش داد. پیش‌تیمار برگ‌های Col-0 با هر دو MAMP، منحنی رشد باکتری Pseudomonas syringae pv. tomato (Pst DC3000) را به‌صورت معنی‌داری تحت تأثیر قرار داد و باعث کاهش سرعت رشد آن شد. علاوه بر این، جمعیت باکتری Xanthomonas axonopodis pv. citri (Xac306) که به‌عنوان غیربیماریزا روی آرابیدوپسیس مطرح است، در برگ‌های گیاهان وحشی که با MAMPها تیمار نشده بودند، بدون تغییر باقی ماند و 48 ساعت بعد از تلقیح، نه کاهش و نه افزایش نشان داد. هر‌چند پیش‌تیمار برگ‌های این گیاه با elf18 به کاهش جمعیت باکتری منجر شد. نتایج این تحقیق نقش ایمنی ذاتی در افزایش مقاومت گیاه نسبت به بیمارگرها را نشان داد.

 آرابیدوپسیس ایمنی ذاتی MAMP Pseudomonas Xanthomonas Botrytis Alternaria A,  Houcine B,  Halima MD,  Imane Z,  Djamal Eddine S,  Abdallah M, Daoudi C (2013) Evaluation of antifungal activity of free fatty acids methyl esters fraction isolated from Algerian Linum usitatissimum L. seeds against toxigenic Aspergillus. Asian Pac J Trop Biomed 3: 443-448. Abramovitch RB, Martin GB (2004) Strategies used by bacterial pathogens to suppress plant defenses. Current Opinion in Plant Biology 7: 356-364. Aist JR (1976) Papillae and related wound plugs of plant cells. Annual Review of Phytopathogy 14: 145-163. Alexander D, Goodman, RM, Gut-Rella M, Glascock C, Weymann K, Friedrich, L, Maddox D, Ahl-Goy P, Luntz T, Ward E, Ryals J (1993) Increased tolerance to 2 oomycete pathogens in transgenic tobacco expressing pathogenesis related protein-1a. Procceding of National Academic Science 90: 7327-7331. Apel K, Hirt H (2004) Reactive oxygen species: metabolism, oxidative stress, and signal transduction. AnnualReview of Plant Biology 55: 373-99 Bayles CJ, Ghemawat MS, Aist JR (1990) Inhibition by 2-deoxy-D-glucose of callose formation. papilla deposition and resistance to powdery mildew in an ml-o barley mutant. Physiol. Mol. Plant Pathology 36: 63-72. Beckman CH, Mueller WC, Teuier BJ, Harrison NA (1982) Recognition and callose deposition in response to vascular. infection in fusa rium wilt-resistant or susceptible tomato plants. Physio1. Plant Pathology 20:1-10. Chisholm ST, Coaker G, Day B, Staskawicz BJ (2006) Host-microbe interactions: shaping the evolution of the plant immune response. Cell 124: 803-814. Chuanfu A, Zhonglin M (2012) Not-host defense response in a novel Arabidopsis-Xanthomonas citri subsp. citri pathosystem. PLoS one 7: 1-12. Dixon RA, Harrison MJ, Lamb CJ (1994) Early events in the activation of plant defense responses. Annual Review of Phytopathology 32: 479-501. Dow M, Newman MA, von Roepenack E (2000) The induction and modulation of plant defense responses by bacterial lipopolysaccharides. Annual Review of Phytopathology38: 241-261 Felix G, Duran JD, Volko S, Boller T (1999) Plants have a sensitive perception system for the most conserved domain of bacterial flagellin. Plant Journal 18: 265-276. Felix G, Grosskopf DG, Regenass M, Basse CW, Boller T (1991) Elicitor induced ethylene biosynthesis in tomato cells. Plant Physiology 97: 19-25. Felix G, Grosskopf DG, Regenass M, Boller T (1991) Rapid changes of protein phosphorylation are involved in transduction of the elicitor signal in plant cells. Procceding of National Academic Science USA 88:8831-4. Felix G., Regenass M, Boller T (1993) Specific perception of subnanomolar concentrations of chitin fragments by tomato cells. Induction of extracellular alkalinization, changes in protein phosphorylation, and establishment of a refractory state. The Plant Journal 4: 307-316 Gomez-Gomez L, Felix G, Boller T (1999) A single locus determines sensitivity to bacterial flagellin in Arabidopsis thaliana. The Plant Jounal18: 277-84. Granado J, Felix G, Boller T (1995) Perception of fungal sterols in plants: subnanomolar concentrations of ergosterol elicit extracellular alkalinization in tomato cells. The Plant Physiology 107: 485-490. Heese A, Hann DR, Gimenez-Ibanez S, Jones AM, He K, Li J, Schroeder JI, Peck SC, Rathjen JP (2007) The receptor-like kinase SERK3/BAK1 is a central regulator of innate immunity in plants. Procceding of National Academic Science USA 104: 12217-12222. Ito Y, Kaku H, Shibuya N (1997) Identification of a high-affinity binding protein for N-acetylchitooligosaccharide elicitor in the plasma membrane of suspension-cultured rice cells by affinity labeling. The Plant Journal 12: 347-356. Jabs T, Tschöpe M, Colling C, Hahlbrock K, Scheel D (1997) Elicitor stimulated ion fluxes and O2- from the oxidative burst are essential components in triggering defense gene activation and phytoalexin synthesis in parsley. Procceding of National Academic Science USA 94:4800-5. Jaffe MJ, Leopoid AC (1984) Callose deposition during gravitropism of Zea mays and Pisum sativum and its inhibition by 2-deoxy-D-glucose. Planta 161: 20-26. Jones JDG, Dangl JL (2006) The plant immune system. Nature 444: 323-329. Katagiri F, Thilmony R, He SY (2002) The Arabidopsis Thaliana-Pseudomonas syringae Interaction. The Arabidopsis Book, Rockville, MD, USA: American Society of Plant Biologists 11-35. Kunze G, Zipfel C, Robatzek S, Niehaus K, Boller T, Felix G (2004) The N terminus of bacterial elongation factor Tu elicits innate immunity in Arabidopsis plants. Plant Cell 16: 3496-507 Niderman T, Genetet I, Bruyère T, Gees R, Stinzi A, Legrand M, Fritig B, Mösinger E (1995) Pathogenesis-related PR-1 proteins are antifungal: Isolation and characterization of three 14 kilodalton proteins of tomato and of a basic PR-1 of tobacco with inhibitory activity against Phytophthora infestans. Plant Physiology 108: 17-22 Nürnberger T, Brunner F, Kemmerling B, Piater L (2004) Innate immunity in plants and animals: striking similarities and obvious differences. Immunological reviews 198: 249-266. Nuernberger T, Lipka V (2005) Non‐host resistance in plants: new insights into an old phenomenon. Molecular plant pathology 6: 335-345. Sacks WR, Ferreira P, Hahlbrock K, Jabs T, Nürnberger T (1993) Elicitor recognition and intracellular signal transduction in plant defense. In: Nester EW, Verma DPS, editors. Advances in molecular genetics of plant-microbe interactions. Dordrecht: Kluwer, p. 485-95. Slanghellini ME, Rasmussen SL, Vandemark GJ (1993) Relationship of callose deposition to resistance of lelluce to Plasmopara lactucae. Phytopathology 83: 1498-1501. Stanghellini ME, Aragaki M (1966) Relation of periderm formation and callose deposi tion to anthracnose resistance in papaya fruit. Phytopathology 56: 444-450. Thürig B, Felix G, Binder A, Boller T, Tamm L (2006) An extract of Penicillium chrysogenum elicits early defense-related responses and induces resistance in Arabidopsis thaliana independently of known signalling pathways. Physiology and Molecular Plant Pathology67: 180-193. Underwood WR (2006) Innate immunity in Arabidopsis thaliana: induction and suppression by Pseudomonas syringae. A dissertation submitted to Michigan State University. Zimmermann S, Nurnberger T, Frachisse J-M,Wirtz W, Guern J, Hedrich R (1997) Receptor-mediated activation of a plant Ca2C-permeable ion channel involved in pathogen defense. Procceding of National Academic Science USA, 94: 2751-5. Zipfel C, Kunze G, Chinchilla D, Caniard A, Jones JD, Boller T, Felix G (2006) Perception of the bacterial PAMP EF-Tu by the receptor EFR restricts Agrobacterium-mediated transformation. Cell 125: 749-760. Jehle AK, Lipschis M, Albert M, Fallahzadeh-Mamaghani V, Fürst U, Mueller K, Felix G (2013) The Receptor-like Protein ReMAX of Arabidopsis thaliana Detects the novel MAMP emax from Xanthomonas. Plant cell25: 2330-2340.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2015.54874 کنترل بیولوژیک بیمایهای گیاهی ارزیابی میزان مهار زیستی Rhizoctonia solani در گیاه پنبه با جدایه‌های Pseudomonas fluorescens ارزیابی میزان مهار زیستی Rhizoctonia solani در گیاه پنبه باجدایه‌های Pseudomonas fluorescens عبداللهی پور فاطمه زهرا کارشناسی ارشد بیماری‌شناسی گیاهی، گروه گیاه‌پزشکی، دانشگاه شهید مدنی آذربایجان شیرزاد اکبر استادیار، گروه گیاه‌پزشکی، دانشگاه شهید مدنی آذربایجان محمدی حمید استادیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشگاه شهید مدنی آذربایجان 21 03 2015 4 1 23 36 20 05 2015 31 08 2015 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2015 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_54874.html

باکتری‌های ریزوسفری محرک رشد، جایگزینی مناسب برای سموم شیمیایی در کنترل بیمارگر‌ها به‌خصوص بیمارگر‌های خاکزاد هستند. Rhizoctonia solani یکی از قارچ‌های مهم بیماریزای خاکزی است که خسارات جدی به محصولات کشاورزی وارد می‌کند. در این پژوهش، میزان بازدارندگی از رشد بیمارگر با جدایه‌های سودوموناس در شرایط آزمایشگاه بررسی شد. جدایه‌های باکتری از لحاظ تولید اکسین، انحلال فسفر، تولید سیدروفور، تولید آنزیم 1ـ آمینوسیکلوپروپان 1ـ کربوکسیلیک اسید (ACC) د ـ آمیناز و ردیابی ژن phlD غربال شدند. از بین جدایه‌های مورد مطالعه 20 جدایه از لحاظ میزان بازدارندگی برای مطالعات بعدی انتخاب شدند که از میان آن‌ها جدایه‌های 139، 33 و 137 بیشترین میزان تولید اکسین و توانایی حل فسفات را داشتند. میان انحلال فسفات و کاهش pH به سمت اسیدی، همبستگی مشاهده شد. از بین جدایه‌ها، 6 جدایه که تولید اکسین بالاتری داشتند و در شرایط آزمایشگاه توانایی خوبی در بازدارندگی از رشد R. solani نشان دادند، برای بررسی توانایی تولید آنزیم  ACCد ـ آمیناز انتخاب شدند. هر 6 جدایه توان تولید آنزیم  ACCد ـ آمیناز را داشتند. ژن phlD که در مسیر بیوسنتز آنتی‌بیوتیک 2ـ 4 دی‌استیل‌ فلورو گلوسینول نقش کلیدی دارد، در جدایه‌های159 ،139 ،137 ، CHA0 و 58A ردیابی شد. با توجه به خصوصیات جدایه‌ها، 5 جدایة کارآمد برای آزمایش‌های گلخانه‌ای انتخاب شد‌ند. در آزمایش‌های گلخانه‌ای، هر 5 جدایه به‌طور معنی‌داری (p ) بیماری را کنترل کردند که بیشترین کنترل‌کنندگی مربوط به جدایة 137 بود.

 بیوکنترل پنبه Rhizoctonia solani؛ Pseudomonas fluoresecns Abbas-Zadeh P, Saleh-Rastin N, Asadi-Rahmani H, Khavazi K, Soltani A, Shoary-Nejati AR,Mohammad Miransari (2010) Plant growth-promoting activities of fluorescent pseudomonads, isolated from the Iranian soils. Acta Physiologae Plantarum 32: 281-288. Ahmad F, Ahmad I, Khan MS (2008) Screening of free-living rhizospheric bacteria for their multiple plant growth promoting activities. Microbiologycal Research 163: 173-181. Amico ED, Cavalca L, Andreoni V (2005) Analysis of rhizobacterial communities in perennial Graminaceae from polluted water meadow soil, and screening of metal-resistant, potentially plant growth-promoting bacteria. FEMS Microbiology Ecology 52: 153-162. Azaddysfani F, Rohani H, Falahati Rastgar M, Mehdikhani magdom A (1390) Cotton immune responses to Trichoderma species and its effect on the control of damping off caused by Rhizoctonia solani. Plant Protection 27: 1-10. (In Persian) Bashan Y (1994) Symptom expression and ethylene production in leaf blight of cotton caused by Alternaria macrospora and Alternaria alternaria taalone and combined. Botany 72: 1574-1579. Belimov AA, Dodd IC, Safronova VI, Hontzeas N, Davies WJ (2007) Pseudomonas brassicacearum strain Am3 containing 1- aminocyclopropane-1-carboxylate deaminase can show both pathogenic and growth-promoting properties in its interactionwith tomato. Experimental Botany 58(6): 1485-95. Belimov AA, Hotzeas N, Safronova VI, Demchinskaya SV, Piluzza G, Bullitta S, Glick BR (2005) Cadmium-tolerant plant growth- promoting bacteria associated with the roots of Indian mustard (Brassica juncea L. Czern.). Soil Biology and Biochemistry 37: 241-250. Bhattacharyya PN and Jha DK (2012) Plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR): emergence in agriculture. Microbiol Biotechnology 28: 1327-1350. Castaneola GC, Munoc TJJ, Videa JRP (2005) A spectrophotometric method to determinethe siderophore production b strain of fluorescent Pseudomonas in the presence of copper and iron. Microchemical 81: 35-40. Dey R, Pal KK, Bhatt DM, Chauhan SM (2004) Growth promotion and yield enhancement of peanut (Arachis hypogaea L.) by application of plant growth-promoting rhizobacteria. Microbiologycal Research 159: 371-394. Duijff BJ, Meijer JW, Bakker PAHM, Schippers B (1993) Siderophore-mediated competition for iron and induced resistance in the suppression of Fusarium wilt of carnation by fluorescent Pseudomonads spp. Plant Pathology. 99: 277-289. Fiddaman PJ, Rossall K (1994) Effect of substrate on the production of antifungal volatiles from Bacillus subtilis. J Applied Bacteriology 79: 395-405. Glass ADM (1989) Plant nutrition: an introduction to current concepts. Jones and Bartlett Publishers, Boston, p 234. Glick BR, Jacobson CB, Schwarze MM, Pasternak JJ (1994) 1-Aminocyclopropane-1 carboxylic acid deaminase mutants of the plant growth promoting rhizobacterium Pseudomonas putida GR12-2 do not stimulate canola root elongation. Microbiology 40: 911-915. Hagedorn C, Gould WD, Bardinelli TR (1998) Rhizobacteria of cotton and their repression of seedling Disease pathogens. Applied and Environmental Microbiology 55: 2793-2797. Harrison  LA, Letendre L, Kovacevich P, Pierson  FA, Weller DM (1993) Purification of an antibiotic effective against Gaeumannomyce graminis var. tritici produced by a biocontrol agent, Pseudomonas aureofaciens. Soil Biogy and Biochemistry 25, 215-221. Han J, Sun L, Dong X, Cai Z, Sun X, Yang H, Wang Y, Song W (2005) Characterization of a novel plant growth-promoting bacteria strain Delftia tsuruhatensis HR4 both as a diazotroph and a potential biocontrol agent against various plant pathogens. Systematic and Applied Microbiology 28(1): 66-76. Hilali A, Przvost D, Broughton WJ, Antoun H (2000) Potential use of Rhizobium leguminosarum bv. trifolii as plant growth promoting rhizobacteria with wheat. Abstract, 17th North American Conference on Symbiotic Nitrogen Fixation, Laval University, Quebec, Canada. Hillocks RJ (1992) Cotton Diseases. C. A. B. International Wallingford. UF. 415 pp. Howell CR, Stipanovic RD (1979) Control of Rhizoctonia solani on cotton seedlings with Pseudomonas fluorescens and with an antibiotic produced by the bacteri um. Phytopathology 69: 480-482. Jeon JS, Lee SS, Kim HY, Ahn TS and Song HG (2003) Plant growth promotion in soil by some inoculated microorganism. Microbiology 41: 271-276. Khakipour N, Khavazi K, Mojallali H, Pazira E, Asadirahmani H (2008) Production of auxin hormone by fluorescent pseudomonads. Agricultural and Environmental Science 4: 687-692. Kloepper J, Lifshitz WR, Schroth MN (1988) Pseudomonas inoculants to benefit plant production. Animal and Plant Sciences 60-64. Kloepper JW, Gutierrez-Estrada A, Mclnroy JA (2007) Photoperiod regulates elicitation of growth promotion but not induced resistance by plant growth-promoting rhizobacteria. Microbiology 53(2): 159-167. Lemanceau P, Robin A, Mazurier S, Vansuyt G (2006) Implication of Pyoverdines in the Interactions of Fluorescent Pseudomonads with Soil Microflora and Plant in the Rhizosphere. Microbal siderophores Pp. 165-192. Loper JE, Henkels MD (1999) Utilization of heterologos siderophores enhances levels of iron available to Pseudomonas putida in the rhizosphere. Applied and Environmental Microbiology 65: 5357-5363. Pal KK, Tilak KVBR, Saxena AK, Dey R, Singh CS (2001) Suppression of maize root diseases caused by Macrophomina phaseolina, Fusarium moniliforme and Fusarium graminearum by plant growth promoting rhizobacteria. Microbiological Research 156: 209-223. Pandey P, Kang SC, Maheshwari DK (2005) Isolation of endophytic plant growth promoting Burkholderia sp. MSSP from root nodules of Mimosa pudica. Current Science 89: 170-180. Patten CL, Glick BR (2002) The role of bacterial indoleacetic acid in the development of the host plant root system. Applied and Environmental Microbiology 68: 3795-3801. Ping  L, Boland W (2004) Signals from the underground: bacterial volatiles promote  growth in Arabidopsis.Trends in plant Science 9: 263-266. Rashid MS, Khalil N, Ayub S, Alam S, Latif F (2004) Organic acids production and phosphate solubilization by phosphate solubilizing microorganisms (PSM) under in vitro conditions. Biology Sciences 7: 187-196. Richardson AE, Barea JM, McNeill AM, Prigent-Combaret C (2009) Acquisition of phosphorus and nitrogen in the rhizosphere and plant growth promotion by microorganisms. Plant and Soil 321: 305-339. Saleem M, Arshad M, Hussain S, Bhatti AS (2007) Perspective of plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) containing ACC deaminase in stress agriculture. Microbiol Biotechnology 34: 635-648. Sharifi R, Ahmadzadeh M, Sharifi Tehrani A, Fallahzadeh V, (1387) Competition for Iron Uptake by Fluorescent Pseudomonads to Control of Rhizoctonia Solani Kuhn Causing Agent of Bean Damping-Off Disease. Plant Protection 22: 183-195. (In Persian) Shirzad A, Valizadeh Kamran R, Ahmadabadi M (1388) Comparison of Fluorescent Pseudomonads DNA extraction methods for PCR. Sixth National Congress of Biotechnology. (In Persian) Shirzad A, Fallahzadeh-Mamagani V, Pazhouhandeh M (2012) Antagonistic potential of Fluorescent pseudomonas and control of crown and root root of cucumber caused by Phythophtora drechsleri. Plant Pathology 28(1): 1-9. Solymani Monfared P, Kazemi Tabar K, Tohidfar M, Ebrahimi T (1391) Identification and cloning of the gene coding for antibiotic DAPG of Fluorescent Pseudomonads UTP-F68 gene. J Genetic of Third Millenary 10(1): 2649-2655. (In Persian) Spaepen S, Vanderleyden J, Remans R (2007) Indole-3-acetic acid in microbial and microorganism-plant signaling. FEMS microbiology Reviews. pp 1-24. Tao G, Tian S, Cai M, Xie G (2008) Phosphate solubilizing and mineralizing abilities of bacteria isolated from soils. Pedosphere 18: 515-523. Tjamos EC, Tsitsigiannis DI, Tjamos SE, Antoniou, PP, Katinakis P (2004) Selection and screening of endorhizosphere bacteria from solarized soil as biocontrol agents against verticillium dahlia of solanaceous hosts. Plant Pathology 110: 35-44. Thomashow LS, Bonsall RF, Weller DM (2002) Antibiotic production by soil and rhizosphere microbes in situ. In Manual of Environmental Microbiology 99: 164-6430. Thomashow LS, Weller DM (1995) Current concepts in the use of introduced bacteria for biological disease control. Plant-microbe interactions 1: 187-235. Wang C, Ramette A, Punjasamarnwong P, Zala M, Natsch A, Moenne-Loccoz Y, Defago G (2001) Cosmopolitan distribution of phlD-containing dicotyledonous crop-associated biocontrol pseudomonads of worldwide origin. FEMS Microbiolology Ecology 37: 105-116. Weller DM (1988) Biological control of soilborne Plant patholgens in the Rhizosphere with bacteria. Annual review of Phytopathology 26: 379-407. Weller DM, Cooke RJ (1983) Suppression of take all of wheat by seed treatment with fluorescent pseudomonas. Phytopathology 73(3): 463-4.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2015.54875 کنترل بیولوژیک بیمایهای گیاهی مطالعه فنوتیپی و ژنوتیپی Pseudomonas fluorescens جدایه PGU0 و ارزیابی توانایی بیوکنترلی آن علیه Rhizoctonia solani عامل مرگ گیاهچه لوبیا جمالی فاطمه استادیار گروه اصلاح نباتات، دانشکدة کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه خلیج‌فارس بوشهر بیات فرشته استادیار گروه اصلاح نباتات، دانشکدة کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه خلیج‌فارس بوشهر 21 03 2015 4 1 37 46 30 05 2015 31 08 2015 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2015 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_54875.html

سودوموناس‌های فلورسنت مولد آنتی‌بیوتیک 2 و 4ـ دی استیل فلورو گلوسینول(DAPG)  برای استفاده به‌عنوان عوامل بیوکنترل، در سراسر دنیا، به‌خوبی مطالعه شده‌اند. استرین Pseudomonas fluorescens PGU0 از ریزوسفر آفتابگردان در استان بوشهر جداسازی شد. آزمون کشت متقابل مشخص کرد که این استرین در شرایط درون‌شیشه‌ای فعالیت آنتاگونیستی علیه قارچ Rhizoctonia solani روی محیط‌های کشت مختلف را دارد و در شرایط اتاقک رشد نیز موجب کاهش شدت بیماری (52 درصد) و افزایش وزن خشک گیاهچه‌های آلودة لوبیا (80 درصد) می‌شود. واکنش زنجیره‌ای پلیمراز با پرایمرهای اختصاصی، وجود ژن‌های کلیدی (phlD، hcnBC و pltB) دخیل در بیوسنتز متابولیت‌های ضد میکروبی، به‌ترتیب،Phl ، پایولوتورین (PLT) و سیانید ‌هیدروژن (HCN) را مشخص کرد. تولید آنتی‌بیوتیک‌ها با کروماتوگرافی مایع با کارایی بالا (HPLC) بررسی و مشخص شد این باکتری توانایی تولید آنتی‌بیوتیک‌های DAPG و PLT را دارد. همچنین، تولید سیانید ‌هیدروژن و سیدروفور در شرایط آزمایشگاهی توسط این باکتری به اثبات رسید. آنالیز فیلوژنتیکی 16S rDNA شباهت این استرین را با سایر استرین‌های بیوکنترل مهم دنیا اثبات کرد که می‌توانند متابولیت‌های ضد میکروبی نظیر Phl و Plt را تولید کنند.

 بیوکنترل پایولوتورین سیانید ‌هیدروژن 2 و 4 ـ دی استیل فلورو گلوسینول Ahmadzadeh M (2001) Influence of antagonistic rhizobacteria of Pseudomonas and Bacillus genus against seed rot and damping-off diseases of beans and studying their antagonistic mechanisms. Ph.D. thesis in Plant pathology, College of Agriculture, Tehran University. (In Persian) Alstrom S (1989) Factors associated with detrimental effects of rhizobacteria on plant growth. Plant and Soil 102: 3-9. Behboudi K (2004)Influence of fluorescent pseudomonads on Sclerotinia sclerotiorum and S. minor and their tolerance to 2,4-diacetylphloroglucinol gene expression in sunflower rhizosphere. Ph.D. thesis in Plant Pathology, College of Agriculture, Tehran University. (In Persian) Benizri E, Courtade A, Picard C, Guckert A (1998) Role of maize root exudates in the production of auxins by Pseudomonas fluorescens M.3.1. Soil Biology and Biochemistry 30: 1481-1484. Bonsall RF, Weller DM, Thomashow LS (1997) Quantification of 2,4-diacetylphloroglucinol produced by fluorescent Pseudomonas spp. in vitro and in the rhizosphere of wheat. Applied Environmental Microbiology 63: 951–955 Bowden K, Broadbent JL, Ross WJ (1965) Some simple anthelmintics. British Journal of Pharmacology 24: 714–724. Castaneda GC, Munoz TJJ, Videa JRP (2005) A spectrophotometric method to determine the siderophore production by strains of fluorescent Pseudomonas in the presence of copper and iron. Microchemical Journal 81: 35-40. Cronin D, Moënne-Loccoz Y, Fenton A, Dunne C, Dowling DN, O’Gara F (1997). Role of 2,4-diacetylphloroglucinol in the interactions of the biocontrol pseudomonad F113 with the potato cyst nematode Globodera rostochiensis. Applied Environmental Microbiology 63: 1357-1361. De La Fuente L, Thomashow L, Weller D, Bajsa N, Quagliotto L, Chernin L, Arias A (2004) Pseudomonas fluorescens UP61 isolated from birdsfoot trefoil rhizosphere produces multiple antibiotics and exerts a broad spectrum of biocontrol activity. European Journal of Plant Pathology 110:671-681. Duffy BK, Défago G (1999) Environmental factors modulating antibiotic and siderophore biosynthesis by Pseudomonas fluorescens biocontrol strains. Applied Environmental Microbiology 65(6): 2429-2438. Fenton AM, Stephens PM, Crowley J, OۥCallaghan M, OۥGara F (1992) Exploitation of gene(s) in 2,4-diacetylphloroglucinol biosynthesis to confer a new biocontrol capability to a Pseudomonas strain. Applied Environmental Microbiology 58: 3873-3878. Frapolli M, Défago G, Möenne-Loccoz M (2007) Multilocus sequence analysis of biocontrol fluorescent Pseudomonas spp. producing the antifungal compound 2,4-diacetylphloroglucinol. Environmental Microbiology 9: 1939-1955. Gould WD, Hagedron C, Bradinelli TR, Zablatowics RM (1985) New selective media for enumeration and recovery of fluorescent pseudomonads from various habitats. Applied Environmental Microbiology 49: 28-32. Haas D, Défago G (2005) Biological control of soil-borne pathogens by fluorescent pseudomonads. Nature Reviews Microbiology 3: 307-319. Handelsman J, Stabb EV (1996) Biocontrol of soilborne plant pathogens. Plant Cell 8: 1855–1869. Jamali F (2009a) Influence of some biotic factors on the expression of hydrogen cyanide- and 2,4-diacetylphloroglucinol biosynthesis genes in Pseudomonas fluorescens on bean rhizosphere, Ph. D. thesis in Plant pathology, College of Agriculture, Tehran University. (In Persian) Jamali F, Sharifi-Tehrani A, Lutz MP Maurhofer M (2009b) Influence of host plant genotype, presence of a pathogen, and coinoculation with Pseudomonas fluorescens strans on the expression of hydrogen cyanide and 2,4-diacetylphloroglucinol biosynthetic genes in P. fluorescens strain CHA0. Microbial Ecology 57(2): 267-275. Keel C, Schnider U, Maurhofer M, Voisard C, Laville J, Burger U, Wirthner P, Haas D, Défago G (1992) Suppression of root diseases by Pseudomonas fluorescens CHA0: Importance of the bacterial secondary metabolite 2,4-diacetylphloroglucinol. Molecular Plant-Microbe Interaction 5: 4-13. Keel C, Weller DM, Natsch A, Défago G, Cook RJ, Thomashow LS (1996) Conservation of the 2,4-diacetylphloroglucinol biosynthesis locus among fluorescent Pseudomonas strains from diverse geographic locations. Applied Environmental Microbiology 62: 552-563. King EO, Ward MK, Rainey DE (1954) Two simple media for the demonstration of pyocyanin and fluorescein. Journal of Laboratory and Clinical Medicine 44: 301-307. Kloepper JW, Tuzun S, Liu L Wei G (1993) Plant growth promoting rhizobacteria as inducers of systemic disease resistance. In: Lumsden RD, Vaughn JL (eds), Pest Management: Biologically Based Technologies, American Chemical Society Books, Washington, DC, USA. pp. 156–165. Kraus J, Loper JE (1995) Characterization of a genomic region required for production of the antibiotic pyoluteorin by the biological control agent Pseudomonas fluorescens Pf-5. Applied Environmental Microbiology 61: 849-854. Landa BB, Mavrodi DM, Raaijmakers JM, McSpadden Gardener BB, Thomashow LS, Weller DM (2002) Differential ability of genotypes of 2,4-diacetylphloroglucinol-producing Pseudomonas fluorescens strains to colonize the roots of pea plants. Applied Environmental Microbiology 68: 3226-3237. Maurhofer M, Keel C, Défago G (1995) Influence of plant species on disease suppression by Pseudomonas fluorescens strain CHA0 with enhanced antibiotic production. Plant  Pathology  44: 40-50. Maurhofer M, Keel C, Haas D, Défago G (1994) Pyoluteorin production by Pseudomonas fluorescens strain CHA0 is involved in the suppression of Pythium damping-off of cress, but not cucumber. European Journal of Plant Pathology100: 221-232. Mavrodi OV, McSpadden Gardener BB, Mavrodi DV, Bonsall RF, Weller DM, Thomashow L S (2001) Genetic diversity of phlD from 2,4-diacetylphloroglucinol-producing fluorescent Pseudomonas spp. Phytopathology 91: 35-43. Mc Spadden Gardener BB, Mavrodi DV, Thomashow LS, Weller DM (2001) A rapid polymerase chain reaction-based assay characterizing rhizosphere populations of 2,4-diacetylphloroglucinol-producing bacteria. Phytopathology 91: 44-54. Mc Spadden Gardener BB, Schroeder KL, Kalloger SE (2000) Genotypic and phenotypic diversity of phlD-containing Pseodomonas strains isolated from the rhizosphere of wheat. Applied Environmental Microbiology 66: 1939-1946. Nowak-Thompson B, Chaney N, Wing JS, Gould SJ and Loper JE (1999) Characterization  of the pyoluteorin  biosynthetic gene cluster  of Pseudomonas  fluorescens Pf-5.  Journal of Bacteriology 181: 2166–2174. Raaijmakers JM, Weller DM, Thomashow LS (1997) Frequency of antibiotic-producing Pseudomonas spp. in natural environments. Applied Environmental Microbiology 63: 881-887. Sharifi-Tehrani, A., Zala, M., Natsch, A., Moënne-Loccoz, Y., and Défago, G. 1998. Biocontrol of soil-borne fungal plant diseases by 2,4-diacetylphloroglucinol-producing fluorescent pseudomonads with different restriction profiles of amplified 16S rDNA. Eur. J. Plant Pathol. 104: 631-643. Siddiqui, I. A., and Shaukat, S. S. 2002. Resistance against the damping-off fungus Rhizoctonia solani systemically induced by the plant-growth-promoting rhizobacteria Pseudomonas aeruginosa (IE-6S+) and P. fluorescens (CHA0). Journal of Phytopathology. 150: 550-506. Sperber JI (1958) The incidence of apatite-solubilizing organisms in the rhizosphere and soil. Australian Journal of Agricultural Research 9: 778-781. Svercel M, Duffy B, Défago G (2007) PCR amplification of hydrogen cyanide biosynthetic locus hcnAB in Pseudomonas spp. Journal of Microbiological Methods 70: 209-213. Thomashow LS, Weller DM (1996) Current concepts in the use of introduced bacteria for biological control: mechanisms and antifungal metabolites, In: Stacey G, Keen NT (eds.), Plant-Microbe Interactions, Vol. 1. Chapman and Hall, New York. pp. 187-235. Voisard C, Bull CT, Keel C, Laville J, Maurhofer M, Schnider U, De´fago G, Haas, D (1994) Biocontrol of root diseases by Pseudomonas fluorescens CHA0: Current concepts and experimental approaches. In: O’Gara F, Dowling DN, Boesten B (eds), Molecular Ecology of Rhizosphere Microorganisms: Biotechnology and the Release of GMOs. VCH Verlagsgesllschaft mbH, Weinheim, Germany. pp. 67– 89. Wang C, Ramette A, Pungasamarnwong P, Zala M, Natsch A, Moënne-Loccoz Y, Défago G (2001) Cosmopolitan distribution of phlD-containing dicotyledonous crop-associated biocontrol pseudomonads of worldwide origin. FEMS Microbiology Ecology 37: 105-116. Weller DM (2007) Pseudomonas biocontrol agents of soilborne pathogens: looking back over 30 years. Phytopathology 97: 250-256. Weller DM, Raaijmakers JM, McSpadden Gardener BB, Thomashow LS (2002) Microbial populations responsible for specific suppressiveness to plant pathogens. Annual Review of. Phytopathology 40: 309-348.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2015.54876 کنترل بیولوژیک بیمایهای گیاهی تاثیر اسانس گیاه سیر، مانکوزب و متالاکسیل- مانکوزب روی سه گونه قارچ فیتوفتورا،عوامل بوته میری گیاهان تاثیر اسانس گیاه سیر، مانکوزب و متالاکسیل- مانکوزب روی سه گونه قارچ فیتوفتورا،عوامل بوته میری گیاهان فرهنگ وحید دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، دانشکدةکشاورزی، دانشگاه کردستان امینی جهانشیر دانشیار گروه گیاه‌پزشکی، دانشکدةکشاورزی، دانشگاه کردستان جوادی تیمور استادیار گروه باغبانی، دانشکدةکشاورزی، دانشگاه کردستان 21 03 2015 4 1 47 56 06 05 2015 11 07 2015 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2015 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_54876.html

در این تحقیق تأثیرات ضد قارچی اسانس گیاه سیر و دو قارچ‌کش متالاکسیل ـ مانکوزب و مانکوزب علیه سه گونة Phytophthora capsici، P. drechsleri و P. melonis عوامل بوته‌میری گیاهان فلفل، خیار و طالبی در شرایط آزمایشگاه و گلخانه ارزیابی شد. تأثیر اسانس سیر و قارچ‌کش‌ها روی کاهش رشد پرگنة قارچ بیمارگر به روش اختلاط با محیط کشت محاسبه و میزان EC50 اسانس سیر روی گونه‌های فیتوفتورا نیز اندازه‌گیری شد. شناسایی ترکیبات تشکیل‌دهندة اسانس سیر نیز با استفاده از دستگاه کروماتوگرافی با طیف‌سنجی جرمی (GC-MS) انجام شد. نتایج آزمایشگاهی نشان داد که اسانس سیر خاصیت قارچ‌ایستایی و تأثیر چشمگیری روی کاهش رشد پرگنة گونه‌های فیتوفتورا دارد. بیشترین و کمترین میزان بازدارندگی رشد ناشی از اسانس سیر به‌ترتیب متعلق به P. capsici و P. drechsleri بود. نتایج گلخانه‌‌ای هم نشان داد که اسانس سیر به‌طور چشمگیری باعث کاهش شدت بیماری بوته‌میری (5/81-7/73 درصد) در مقایسه با شاهد شد، به‌طوری که، تأثیرات آن از لحاظ آماری بیشتر از قارچ‌کش مانکوزب (4/68ـ5/60 درصد) و کمتر از قارچ‌کش متالاکسیل ـ مانکوزب (1/92ـ2/84 درصد) روی کاهش بیماری بود. تعداد 25 ترکیب شیمیایی از اسانس سیر جداسازی و شناسایی شد که در بین آن‌ها Diallyl tetra sulfide (32/31 درصد)، Allyl disulfide (78/26 درصد)، Nitrosothymol (64/8 درصد)، 1H-1,2,4-Triazole, 3-thiol-5-methyl (40/8 درصد) وAllylsulphide (15/6 درصد) به‌ترتیب بیشترین مقادیر را به خود اختصاص دادند. نتایج این تحقیق نشان می‌دهد که اسانس سیر توانایی لازم برای کنترل بیماری بوته‌میری گیاهان را به‌عنوان قارچ‌کش در تولید محصولات ارگانیک دارد و نیاز است که تحقیقات بیشتری دربارة آن انجام شود.

 اسانس سیر بوته‌میری فیتوفتورا مانکوزب متالاکسیل ـ مانکوزب Amini M, Safaie N, Salmani MJ, Shams-Bakhsh, M (2012) Antifungal activity of three medicinal plant essential oils against some phytopathogenic fungi. Anniversary Edition Trakia Journal of Science 10 (1): 1-8. Amvam zollo PH, Biyti L, Tchoumbougnang F, Menut C, Lamaty G, Bouchet P (1998) Aromatic plants of tropical central Africa. Part ΧΧΧΙΙ. Chemical composition and antifungal activity of thirteen essential oils from aromatic plants of Cameroon. Flavour Fragrance Journal 13: 107-114. Bajpai VK, Kang SC(2012)In vitro and In vivo inhibition of plant pathogenic fungi by essential oil and extracts of Magnolia liliflora Desr. Journal of Agriculture Science Technology 14: 845-856. Bajpai VK, Lee TJ, Kang SC (2008) Chemical composition and in vitro control of agricultural plant pathogens by the essential oil and various extracte of Nandina domestica Thunb. Journal of Science of Food and Agriculture 89: 109-116. Belewu MA, Olatunde OA, Giwa TA (2009) Underutilized medicinal plants and spices: chemical composition and phytochemical properties. Journal of Medicinal Plant Research 3(12): 1099-1103. Bi Y, Jiang H, Hausbeck MK, Hao JJ (2012) Inhibitory effect of essential oils for controlling Phytophthoracapsici. Plant Disease 96: 797-803. Corzomartinez M, Corzo N, Villamiel M (2007) Biological properties of onions and garlic. Trands Food Sci. Technol 18: 609-625. Cowan MM (1999) Plant products antimicrobial agents. Clinical Microbiology Review 12: 564-582. Daniela Portz, Eckhard Koch, Alan J Slusarenko (2008) Effect of garlic (Allium sativum) juice containing allivin on Phytophthora infestans and downy mildew of cucumber caused by Pseudoperonospora cubensis. European Journal of Plant Pathology 122: 197-206. DimaMnayer, Anne-Sylvie Fabiano-Tixier, Emmanuel Petitcolas (2014) Chemical composition, antibacterial and antioxidant activities of six essential oils from the Allium family. Molecules 19: 20034-20053. D'Mello JPF, Macdonald AMC, Postel D, Dijksma WTP, Dujardin A, Placinta CM (1998) Pesticide use and mycotoxin production in Fusarium and Aspergillus phytopathogens. European Journal of Plant Pathology 104: 741-751. Ershad J (1992) Phytophthora species in Iran. Agricultural research organization, Tehran, Iran, 217p. Etebarian HR (2012) Diseases of vegetable and cucurbit and their control. Published by University of Tehran, 600 pp. Feen ME, Coffey MD (1984) Studies on the in vitro and in vivo antifungal activity of Fosetyl-Al and Phosphorous acid. Phytopathology 74: 606-611. Johnson OO, Ayoola GA, Adenipekun T (2013) Antimicrobial activity and the chemical composition of the volatile oil blend from Allium sativum (Garlic Clove) and Citrus reticulate (Tangeeine Fruit). International Journal of Pharmaceutical Science and Drug Research 5(4): 187-193. Khan MA, Zhihui C, Xuemi X, Khan AR Ahmed SS (2011) Ultrastructural studies of inhibition effect against Phytophthoracapsici of root exudates collected from two garlic cultivars along with their qualitative analysis. Crop Protection 30: 1149-1155. Mahlo SM, McGaw LJ, Eloff JN (2010) Antifungal activity of leaf extracts from South African trees against plant pathogens. Crop Protection 29: 1529-1533. Martinez MC, Crozo N, Vilamiel M (2007). Biological properties of onion and garlic. Trend in Food-Science and Technolog 18: 609-625. Muhammad Azam Khan, Cheng Zhihui, Xiao Xuemei (2011) Ultrastructural studies of the inhibition effect against Phytophthora capsici of root exudates collected from two garlic cultivars along with their qualitative analysis. Crop Protection 30: 1149-1155. Oxenham SK, Svoboda KP, Walters DR (2005) Antifungal activity of the essential oil of basil (Ocimum basilicum). Journal of Phytopathology 153: 174-180. Rahimi-Nasrabadi, Nazarian SH, Farahani H, Fallah-Koohbijari GR, Ahmadi F, Batooli H (2013) Chemical composition, antioxidant, and antibacterial activities of the essential oil methanol extracts of Eucalyptus largiflorens. Int Journal Food Proper 16(2): 369-381. Ramsey sealy, Michael R Evans, Craig Rothrock (2007) The effect of a garlic extract and root substracte on soilborne fungal pathogens. Hort Technology 17(2): 168-173. Rasooli I, Moosavi ML, Reazee MB, Jaimand K (2002) Suceptibility of microorganisms to Myrtuscommunis L. essential oil and its chemical composition. Agriculture Science Technology 4: 127-133. Russel PE, Mussa AEA (1977) The use of garlic (Allium sativum) extract to control root rot of Phaseolus vulgaris caused by Fusarium solani f. sp. phaseoli. Annals of Applied Biology 86: 369-372. Sacchetti G, Maietti S, Muzzoli M, Scaglianti M, Manfredini S, Radica M (2005) Comparative evaluation of 11 essential oils of different origin as functional antioxidants, antiradicals and antimicrobials in food. Food Chemistry 91: 621-632. Sarpeleh A, Sharifi K, Sonbolkar A(2009) Evidence of antifungal activity of wild rue (Peganum harmala L.) on phytopathogenic fungi. Journal of Plant Diseases and Protection 116(5): 208-213. Serra R, Lourenco A, Alipio P, Venancio A (2006) Influence of the region of origin on th mycobiota of grapes with emphasis on Aspergillus and Penicillium species. Mycological Researches 110: 550-553. Shouan Zhang, Thomas L White, Miriam C Martinez, John Aclnroy, Joseph W Kloepper, Waldemar Klassen. (2010) Evaluation of plant growth-promoting rhizobacteria for control of Phytophthora blight on squash under greenhouse conditions. Biological Control 53: 129- 135. Singh UP, Chauhan VB, Waqner KG, Kumar A (1992) Effect of ajoene, a compound derived from garlic (Allium sativum), on Phytophthora drechsleri f. sp. cajani. Mycologia 84: 105-108. Singh UP, Pathak KK, Khare MN, Singh RB (1979) Effect of leaf extract of garlic on Fusarium oxysporum f. sp. ciceri, Sclerotiniasclerotiorum and on gram seeds. Mycologia 71: 556-564. Siripornivorus S, Rngprom W, Sawatdikan S (2009) Antifungal activity of essential oils derived from som medicinal plant against grey mould (Botrytis cinerea). Asian Journal of Food and Agro-Industry 229-233. Sitara U, Niaz I, Naseem J, Sultana N (2008) Antifungal effect of essential oil on in vitro growth of pathogenic fungi. Pakistan Journal of Botani 40: 409-414. Sokovic M, Griensven LJLD (2006) Antimicrobial activity of essential oils and their components against the three major pathogens of cultivated button mushroom Agaricusbisporus. European Journal of Plant Pathology 116: 211- 224. Soylu EM, Soylo S, Kurt S (2006) Antimicrobial activities of the essential oils of various plants against tomato late blight disease agent Phytophthora infestans. Mycopathologia 161: 119-128. Stamps DJ, Waterhouse GM, Newhook FJ, Hall GS (1990) Revised tabular key to the species ofPhytophthora. Mycol Pap162: 28 pp. Tariq VN, Magee AC (1990) Effect of volatiles from garlic bulb extract on Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici. Mycological Research 94: 617-620. Tabarraei M, Amini J, Harighi B (2011) Effect of fluorescent Pseudomonads for control of damping-off disease of cantaloupe caused by Phytophthora drechsleri. Australian Journal Crop Science 5(11): 1427-1433. Yaouba A, Tatsadjieu NL, Jazet Dongmo PM, Francois Xavier E, Mbofung CM (2010) Antifungal properties of essential oils and some constituents to reduce foodborne pathogen. Journal of Yeast and Fungal Research 1: 1-8. Zhang JW, Li SK, Wu WJ(2009) The main chemical composition and in vitro antifungal activity of the essential oils of Ocimum basilicum Linn. var. pilosum (Willd.) Benth. Molecules 14: 273-278.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2015.55281 کنترل بیولوژیک بیمایهای گیاهی تاثیر نانو امولسیون اسانس دارچین در کاهش پوسیدگی های پس از برداشت میوۀ توت فرنگی تاثیر نانو امولسیون اسانس دارچین در کاهش پوسیدگی های پس از برداشت میوۀ توت فرنگی علیزاده حمیدرضا استادیار گروه گیاه‌پزشکی، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه جیرفت فرزانه محسن استادیار گروه کشاورزی، پژوهشکدة گیاهان و مواد اولیة دارویی، دانشگاه شهید بهشتی، اوین ـ تهران اعظمی ذبیح الله استادیار گروه گیاه‌پزشکی، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه جیرفت 21 03 2015 4 1 57 64 13 07 2015 13 10 2015 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2015 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_55281.html

کاربرد اسانس‌ها در کنترل بیمارگرهای گیاهی عموماً به‌دلیل محلولیت پایین در آب، فشار بخار بالا و ناپایداری فیزیکی و شیمیایی با دشواری‌هایی همراه است. یکی از روش‌های به‌حداقل‌رساندن این تأثیرات، استفاده از سیستم نانوامولسیون است. افزون بر این ضمن سهولت کاربرد و پایداری باعث افزایش خواص ضد میکروبی نیز می‌شود. در این تحقیق، پس از تهیة اسانس دارچین (Cinammon zeylanicum)، نانوامولسیون اسانس تهیه و مشخصات فیزیکی ‌و شیمیایی آن مشخص شد. اندازة ذره‌ای نانوامولسیون 97/3±33/115 نانومتر تعیین شد. امولسیون و نانوامولسیون اسانس به‌همراه قارچ‌کش تیابندازول در غلظت‌های مختلف مادة مؤثره برای کنترل قارچ‌های Rhizopus stolonifer و Botrytis cinerea عامل پوسیدگی میوة توت‌فرنگی مطالعه شدند. نتایج در محیط کشت جامد PDA نشان داد که امولسیون و نانوامولسیون اسانس دارچین تفاوت معنی‌داری در فعالیت ضد قارچی نداشت و علیه قارچ‌های B. cinerea و R. stoloniferبه‌ترتیب حداقل غلظت بازدارندگی کامل برابر 500 و 1000 میکرولیتر مادة مؤثره در لیتر محیط کشت نشان دادند. نتایج روی میوه نشان داد که نانوامولسیون اسانس نسبت به امولسیون اسانس، تأثیر بیشتری در کاهش پوسیدگی‌های قارچی میوة توت‌فرنگی دارد. در بالاترین غلظت کاربردی (2 در هزار)، بین تیابندازول با نانو‌امولسیون اسانس دارچین تفاوت معنی‌دار در کاهش پوسیدگی رایزوپوسی میوه مشاهده نشد. در کنترل پوسیدگی خاکستری میوه، ناشی از B. cinerea نانوامولسیون دارچین در غلظت‌های 2 در هزار و 1 در هزار به‌ترتیب با 33/3 و 83/5 درصد پوسیدگی خاکستری میوه، بیشترین تأثیر را در کاهش پوسیدگی داشت. نانوامولسیون اسانس دارچین برای ساخت قارچ‌کش‌های طبیعی می‌تواند توصیه شود.

 اسانس دارچین توت‌فرنگی کنترل پوسیدگی قارچی نانوامولسیون Ardalan F (2014) Formulation of nanoemulsions from essential oil of Cinnamomum zeylanicum in treatment of Helicobacter pylori infection. Master of Science thesis, Medicinal Plants and Drug Research Institute, Shahid Beheshti University. Pp.72. (in Persian) Asghari Marjanlo A, Mostofi Y, Shoeibi Sh, Fattahi M (2008) Effect of basil essence on controlling gray rot and postharvest quality of strawberries. Journal of Medicinal Plants, 8(1): 131-139. Barkai-Golan R (2001) Postharvest Diseases of Fruits and Vegetables, Development and Control. Elsevier Science B.V. Amsterdam 22: 39-46. Behnam S, Farzaneh M, Ahmadzadeh M, Tehrani AS (2006)Composition and antifungal activity of essential oils of Mentha piperita and Lavendula angustifolia on post-harvest phytopathogenes. Communications in agricultural and applied biological sciences, 71: 1321-1326. Behnamian M, Masiha S (2002) Strawberry. Sotodeh Publishing. Tabriz, Iran. Pp.120. (in Persian) Bendahou M, Muselli A, Grignon-Dubois M, Benyoucef M, Desjobert JM, Bernardini AF (2008) Antimicrobial activity and chemical composition of Origanum glandulosum Desf. essential oil and extract obtained by microwave extraction: Comparison with hydro distillation. Food Chemistry 106: 132-139. Bouchra C, Achouri M, Idrissi-Hassani LM, Hmamochi M (2003) Chemical composition and antifungal activity of essential oils of seven Morcoccan Labiatea against Botrytis cinerea Pers : Fr. Journal of Ethnopharmacology 89: 165-169. Burt S (2004) Essential oils: Their antibacterial properties and potential applications in foods – A review. International Journal of Food Microbiology 94(3): 223-253. Charles A, Onyeani SO, Osunlaja OO, Oworu AO (2012) Evaluation of effect of aqueous plant extract in the control of storage fungi. International Journal of Science and Technology 1(6): 72-82. Chebli B, Hmamouchi M, Achouri M, Idrissi–Hassani LM (2004) Composition and in vitro fungitoxic activity of 19 essential oils against two post-harvest pathogens. Journal of Essential Oils Research 16: 507-511. Defera DJ, Zigas BN, Polission MG (2002)The effectiveness of plant essential oils on the growth of Botrytis cinerea, Fusarium sp. and Clavibacter michiganensis subsp. Michiganensis. Crop Protection 22: 39-44. Donsi F, Annuanziata M, Sessa M, Ferrari G (2011) Nanoencapsulation of essential oils to enhance their antimicrobial activity in foods. Food Science and Technology 44: 1908-1914. Farzaneh M, Ranjbar H, Hadian J, Mirjalili MH (2007) Biological control of some postharvest diseases of strawberry fruit by essential oils. 59th international symposium on crop protection, Ghent University 273. Ghaderi L (2014) Formulation of nanoemulsions from essential oil of Thymus daenensis in treatment of sinusitis. Master of Science thesis, Medicinal Plants and Drug Research Institute, Shahid Beheshti University. Pp.96. (in Persian) Ghosh V, Mukherjee A, Chandrasekaran N (2013) Ultrasonic emulsification of food-grade nanoemulsion formulation and evaluation of its bactericidal activity. Ultrasonics Sonochemistry 20(1): 338-344. Goni P, Lopez P, Sanchez C, Gomez-Lus R, Becerril R, Nerin C (2009) Antimicrobial activity in the vapour phase of a combination of cinnamon and clove essential oils. Food Chemistry 116:  982-89. Gyawali R, Ibrahim SA (2014) Natural products as antimicrobial agents. Food Control 46: 412-429 Hammer KA, Carson CF, Riely TV (1999) Antimicrobial activity of essential oils and other plant extracts. Journal of Applied Microbiology 86: 985-990. Huang R, Li GQ, Zhang J, Yang L, Che HJ, Jiang DH, Huang HC (2011) Control of postharvest Botrytis fruit rot of strawberry by volatile organic compounds of Candida intermedia. Phtopathology 101(7): 859-869. Hyldgaard M, Mygind T, Meyer RL (2012) Essential oils in food preservation: mode of action, synergies, and interactions with food matrix components. Frontiers in Microbiology 3: 1-12. Lee SO, Choi GJ, Jang KS, Lim HK, Cho KY, Kim JC (2007)Antifungal activity of five plants essential oils as fumigant against postharvest and soil borne plant pathogenic fungi. Plant Pathology Journal 23(2): 97-102. Mandal A, Bera A (2012) Surfactant stabilized nanoemulsion: Characterization and application in enhanced oil recovery. World Academy of Science, Engineering and Technology 67: 21-26. Mason TG, Wilking JN, Meleson K, Chang CB, Graves S (2006) Nanoemulsions: formation, structure and physical properties. Journal of Physics: condensed matter 18: 35-66. Narayanasamy P (2006) Postharvest pathogens and disease management. John Wiley and Sons Inc. Hoboken, New Jersey. Ozan M (2003) Antifungal effects of some Turkish spice essential oils on Aspergillus niger and Botrytis cinerea growth. Agrimedia GmbH 8: 173-175. Paster N, Menasherov M, Ravid U, Juven B (1995) Antifungal activity of oregano and thyme essential oils applied as fumigants against fungi attacking stored grain. Journal of Food Protection 58: 81-85.  Pourhossein-Alamdary M (2012)Design formulation of Satureja khuzistanica essential oil nanoemulsions in treatment of sinusitis. Master of Science thesis, Medicinal Plants and Drug Research Institute, Shahid Beheshti University. Pp.116. (in Persian) Ranjbar H, Farzaneh M, Hadian J, Mirjalili MH, Sharifi R (2008) Antifungal activity of the some essential oils on postharvest diseases of strawberry fruit. Pajouhesh and Sazandegi 81: 54-60. (in Persian) Reddy MVB, Angers P, Gosselin A, Arul J (1997) Characterization and use of essential oil from Thymus vulgaris against Botrytis cinerea and Rhizopus stolonifer in strawberry fruits. Phytochemistry 47: 1515-1520. Seifi F, Farzaneh M, Rafati H, Rezadoost H (2014) Antifungal potency of some medicinal plants essential oils nanoemulsions to control soft rot in strawberry fruit caused by Rhizopus stolonifer. Biocontrol in Plant Protection 01 2(1): 69-79. (in Persian) Tajkarimi M, Ibrahim S, Cliver D (2010) Antimicrobial herb and spice compounds in food. Food Control 21(9): 1199-1218. Tripathi P, Dubey NK, Shukla AK (2008) Use of some essential oils as post-harvest botanical fungicides in the management of grey mold of grapes caused by Botrytis cinerea. World Journal of Microbiology and Biotechnology 24: 39-46. Vagelas I, Papachatzis A, Kalorizou H, Wogiatzi E (2009) Biological control of Botrytiscinerea fruit rot (Gray mold) on strawberry and redpepper by olive oil mill wastewater. Biotechnologyand Biotechnological Equipment 23(4): 1489-1491. Wilkinson JB (1994) Harry's Cosmeticology, Longman Scientific and Technical, 588-625. Will F, Kruger E (1999) Fungicide residues in strawberry processing. Journal of Agricultural and Food Chemistry 47(3): 858-61. Ziedan EHE, Farrage ESH (2008) Fumigation of peach fruits with essential oils to control postharvest decay. Research Journal of Agriculture and Biological Sciences 4(5): 512-519.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2015.55611 کنترل بیولوژیک آفات ترجیح میزبانی و تأثیر دما بر واکنش تابعی زنبور (Hym.: Aphidiidae) Aphidius matricariae روی شتۀ معمولی گندم ترجیح میزبانی و تأثیر دما بر واکنش تابعی زنبور (Hym.: Aphidiidae) Aphidius matricariae روی شتل معمولی گندم حاج رحمت اللهی فاطمه مربی گروه گیاه‌پزشکی، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه شهید باهنر کرمان راشکی مریم استادیار، گروه تنوع زیستی، پژوهشکدة علوم محیطی، پژوهشگاه علوم و تکنولوژی پیشرفته و علوم محیطی، دانشگاه تحصیلات تکمیلی صنعتی و فناوری پیشرفته، کرمان شیروانی اصغر استادیار، گروه گیاه‌پزشکی، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه شهید باهنر کرمان 21 03 2015 4 1 65 72 17 05 2015 14 10 2015 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2015 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_55611.html

در این پژوهش، ترجیح میزبانی زنبور پارازیتوییدAphidius matricariae Haliday  طی آزمون‎های انتخابی و غیر‌انتخابی روی مراحل مختلف رشدی شته و واکنش تابعی این پارازیتویید روی شتة معمولی گندمSchizaphis graminum Rondani  با استفاده از گیاه گندم، رقم الوند، در شرایط آزمایشگاهی بررسی شد؛ این شرایط شامل سه دمای 20، 25 و 30 درجة سلسیوس، رطوبت نسبی 10±70 درصد و دورة نوری 16:8 (روشنایی: تاریکی) بود. بیشترین میانگین پارازیتیسم در آزمون‎های انتخابی و غیر‌انتخابی روی پورة سن سوم شته و به‌ترتیب 43/0±1/5 و 61/0± 3/10 پوره و کمترین آن روی پورة سن اول به‌دست آمد. نتایج رگرسیون لجستیک داده‎های واکنش تابعی نشان داد که واکنش تابعی زنبور نسبتبه تراکم‎های مختلف شته در سه دمای20، 25 و 30 درجة سلسیوس، از نوعII  است. برای تخمین پارامترهای قدرت جست‌وجو و زمان دستیابی از معادلة راجرز استفاده شد. بیشترین مقدار جست‌وجو و کمترین زمان دستیابی در 20 درجة سلسیوس، به‌دست آمد.

 پارازیتیسم پورة سن سوم قدرت جست‌وجو Schizaphis graminum Amini jam N, Kochyli F, Mossadegh MS, Rasekh A, Saber M (2012) Effect of imidacloprid and primicarb on functional response of Aphidius matricariae Haliday (Hym.: Aphidiidae) under Laboratory conditions. Plant Pest Research 2(3): 51-61. (In Persian) BaverstockJ (2004) Interaction between aphids, their insect and fungal natural enemies and the host plant. Ph.D., Thesis University of Nottingham, Leicestrshire, United Kingdom. Bhattarai T, Hess D (2001) Yield responses of Nepalese spring wheat (Triticum aestivum) cultivars to inoculation with Azospirillum spp. of Nepalese origin. Plant and Soil 151: 67-76. Blackman RL, Eastop VF (2007) Taxonomic issues, In: van Emden HF, Harrington R (eds), Aphids as crop pests. CAB International, Trowbridge, United Kingdom. pp. 1-30. van Driesche RG, Bellows TS (1996) Biological control. Chapman and Hall, New York. Fenemore PG, Norton GA (1985) Problems of implementing improvements in pest control: a case study of apples in the UK. Crop Protection 4(1): 51-70. Holling CS (1966) The functional response of invertebrate predators to prey density. Memoirs of the Entomological Society of Canada 48: 1-86. Hughes RD (1989) Biological control in the open field, In: Minks AK and Harrewijn P (eds), Aphids, their biology, natural enemies and control. Vol. C, Elsevier, the Netherlands. pp. 167-198. Jacobson RJ, Croft P (1998) Strategies for the control of Aphis gossypi in protected cucumbers. Biocontrol Science and Technology 8: 377-378. Jouraeva VA, Johnson DL, Hassett JP, Nowak D, Shipunova NA, Barbarossa D (2006) Role of sooty mold fungi in accumulation of fine-particle-associated PAHs and metals on deciduous leaves. Environmental Research 12: 272-282. Juliano SA (2001) Non-linear curve fitting: Predation and functional response curves. Scheiner, SM, Gurevitch J (eds), Design and analysis of ecological experiments. 2nd Edition, Chapman and Hall, New York. pp. 159-182. Kazemi M, Farhad A, Talebi AA (2012) Temperature dependent Functional response of Diaeretiella rapae (Hym.: Braconidae) on Schizaphis graminum (Hem.: Aphididae) in a laboratory conditions. In: the 20th Iranian plant protection congress, 26-29 Aug., Shiraz University, Shiraz, Iran. 16. (In Persian) Kelman WM, Qualset CO (1999) Breeding for salinity stressed environments: recombinant inbred wheat line under saline irrigation. Crop Science 31: 1223-1228. Mackauer M, Stary P (1967) Hymenoptera. Ichneumonoidea. World Aphidiidae, In: Delucchi V, Remaudiere G (eds), Index of entomophagous insects. Le Francois, France. Pp. 1-195. Mescheloff E, Rosen D (1988) Biosystematic studies on the Aphidiidae of Israel (Hymenoptera: Ichneumonoidea). The genera Ephedrus and Praon. Israel Journal of Entomology 22: 75-100. Michaels GJ (1986) Graminaceous North American hosts of the greenbug with notes on biotypes. Southwestern Entomology 11: 55-66. Pasandideh A, Talebi AA, Hajighanbar HR (2013) Host stage preference of the pea aphid, Acyrthosiphon pisum (Hem.: Aphididae) by Praon volucre (Hym.: Braconidae). In: the conference of biological control in agriculture and natural resources, 27-28 Aug., University of Tehran, Tehran, Iran. 5. (In Persian) Sallam NM, Overholt WA, Kairue E (1999) Comparative evaluation of Cotesia flavipes and C. sesamiae (Hymenoptera: Braconidae) for the management of Chilo partellus (Lepidoptera: Pyralidae) in Kenya. Bulletin of Entomological Research 89: 185-191. SAS Institute (1997) PROC user's manual, version 6.12 SAS Institute, Cary, NC. Shahrokhi khanghah S, Shojaee M, Rezvani A, Abdollahi GhA (2004) Characterizes biology and life table parameters wasp parasitoid Aphidius matricariae Haliday (Hym.: Aphidiidae) in compare with hosts aphid Schizaphis graminum Rondani (Hem.: Aphididae). In: the 16th Iranian plant protection congress, 28 Aug.-1 Sep., University of Tabriz, Tabriz, Iran. 37. (In Persian) Sinclair ARE, Fryxell JM, Caughley G (2006) Wildlife ecology, conservation and management. Wiley-Blackwell, United Kingdom. Stary P (1988) Natural enemies. In: Minks AK and Harrewijn P (eds), Aphids, their biology, natural enemies and control. Vol. B, Elsevier, the Netherlands. pp. 171-184. Tahriri S, Talebi A, Talebi AA, Fathipour Y, Zamani AA (2007) Host stage preference, functional response and mutual interference of Aphidius matricariae (Hym.: Braconidae: Aphidiinae) on Aphis fabae (Hom.: Aphididae).  Entomological Science 10: 323–333. Triplehorn CA, Johnson NF (2005) Borror and DeLong's Introduction to the Study of Insects. 7th ed. Thomson, New York, 864pp. Zamani AA, Talebi AA, Fathipour Y, Baniameri V (2006) Temperature-dependent functional response of two aphid parasitoids, Aphidius matricariae, Aphidius colemani (Hymenoptera: Braconidae) on the cotton aphid. Journal of Pest Science 79: 183-188.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2015.55612 کنترل بیولوژیک بیمایهای گیاهی بررسی اسانس گیاه دارویی اسطوخودوس و مرزه علیه قارچ Fusarium solani بررسی اسانس گیاه دارویی اسطوخودوس و مرزه علیه قارچ Fusarium solani سالک معراجی هادی دانش‌آموختة کارشناسی ارشد،گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه ایلام زارع محمد جواد دانشیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه ایلام نوراللهی خشنود استادیار، گروه گیاه‌پزشکی، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه ایلام سالک نقدی روح اله دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه آزاد تاکستان تفرشی سید خشایار دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه باغبانی، رشتة گیاهان دارویی، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه آزاد ساوه 21 03 2015 4 1 73 76 07 02 2015 22 08 2015 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2015 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_55612.html

بیشتر اسانس‌های گیاهی استخراج‌شده از گیاهان دارویی خواص ضد قارچی، ضد انگلی، ضد باکتریایی و ضد ویروسی دارند. قارچ جنس Fusariuاز قارچ‌های مهم بیماریزای گیاهی است که دامنة میزبانی بسیار وسیعی دارد. قارچ Fusarium solaniیکی از گونه‌های این جنس است. برای بررسی تأثیر جداگانه و تلفیقی اسانس گیاه دارویی اسطوخودوس و مرزه بر کنترل این قارچ بیماریزا، آزمایشی در پنج غلظت (صفر، 25، 50، 75 و 100 ppm) با پنج تکرار در شرایط آزمایشگاهی انجام شد. نتایج این آزمایش نشان داد که درصد بازدارندگی اسانس مرزه نسبت به اسانس اسطوخودوس بیشتر است. در کاربرد جداگانة اسانس‌ها، در هیچ غلظتی رشد قارچ به‌طور کامل متوقف نشد، اما کاربرد ترکیبی اسانس اسطوخودوس و مرزه رشد قارچ را در بالاترین غلظت اسانس به‌طور کامل متوقف کرد.

 اختلاط با محیط کشت ترکیبات گیاهی ضد میکروبی Fusarium Solani Abbott  WS (1925) A method of computing the effectiveness of an insecticide. Journal Economic Entomol; 18: 265-267. Adebola O, Olusegun E, Olayide N (1999) Antimicrobial activity of the essential oils of five Eucalyptus species growing in Nigeria. Fitotera; 70: 526-528. Hayes WJ, Laws ER (1991) Handbook of pesticide toxicology. Academic Press, New York, 1576 p. Kohan Moo MA, Jamali F (2013) Antifungal action essential oils multi medicinal plants on the Fusarium oxysporum f.  sp. lycopersici fungi. Biological Control of Pests and Plant Diseases; 2(1): 27-33. (In Persian) Mohana DC, KA Raveesha and R Lokanath (2008) Herbal remedies for the management of seed-borne fungal pathogens by an edible plant decalepis hamiltonii (Wight and Arn). Archives of Phytopathology and Plant Protection; 41(1): 38-49. Nelson PE, Toussoun TA, Cook RJ (1981) Fusarium, diseases, biology, and taxonomy.Univ. Park, London, U.S.A.The Penn. State Univ. Press. 457 p. Salek Mearaji H, Zarea MJ, Nurollahi Kh (2013) Investigate  anti fungal essential oil Lavandula angustifoila against Fusarium solani, National conference on medicinal plants, Hamedan. (In Persian) Samsam Sheriat H (2006) Medicinal plants. Chaharbagh publisher, Iran. P: 146-150. (In Persian) Saremi H (1989) Ecology and taxonomy of Fusarium species, Jahad, Mashhad University Press, first edition, Chapter I, page 19. (In Persian) Surender KB (2012) Evaluation of plant extracts as antifungal agents against Fusarium solani (Mart.) Sacc, World Journal of Agricultural Sciences; 8 (4): 385-388. Upson T, Andrews S (2004) The genus Lavandula. Royal Botanic Gardens, Kew. Zargari A (1993). Medicinal plants, edition 5. Tehran University Publication, volume 2, pp: 924. (In Persian)
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2015.56070 unavailable چکیده های انگلیسی 21 03 2015 4 1 1 8 12 01 2016 12 01 2016 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2015 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_56070.html

unavailable