پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2014.53380 کنترل بیولوژیک آفات کنترل بیولوژیک کرم سیب با استفاده از زنبور پارازیتوئید Trichogramma embryophagum بر مبنای مدل پیش‌آگاهی ساعت ـ درجه کنترل بیولوژیک کرم سیب با استفاده از زنبور پارازیتوئید Trichogramma embryophagum بر مبنای مدل پیش‌آگاهی ساعت ـ درجه رنجبر اقدم حسین استادیار، بخش کنترل بیولوژیک، مؤسسة تحقیقات گیاه‌پزشکی کشور،تهران عطاران محمد رضا استادیار، آزمایشگاه تحقیقات کنترل بیولوژیک، معاونت تحقیقات برنج کشور،تهران 23 09 2014 3 2 87 96 03 12 2014 25 01 2015 Copyright © 2014, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2014 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_53380.html

کرم سیب، Cydia pomonella،آفت کلیدی باغ‌های سیب است. در این پژوهش، کارایی سوش بومی زنبور پارازیتوئید Trichogramma embryophagum در کنترل بیولوژیک کرم سیب، ضمن تعیین دقیق زمان رهاسازی زنبورها با استفاده از مدل پیش‌آگاهی از فنولوژی بر مبنای ساعت ـ درجة سلسیوس، در کنار تیمار کنترل شیمیایی و شاهد در یک باغ سیب ارزیابی شد. همچنین، ضمن تعیین بیوفیکس کرم سیب با استفاده از تله‌های فرمونی، دمای محیط به‌منظور محاسبة مجموع گرمای مؤثر تأمین‌‌شده ثبت شد. براساس داده‌های دمایی و با توجه به مدل پیش‌آگاهی فنولوژیک، مناسب‌ترین زمان‌ها برای رهاسازی سوش انتخاب‌شدة زنبور به‌منظور کنترل بیولوژیک کرم سیب تعیین شد. رهاسازی زنبور تریکوگراما در پنج مرحله برای دو نسل کرم سیب انجام شد. نتایج ارزیابی کارایی روش کنترل بیولوژیک در مقایسه با کنترل شیمیایی نشان داد که بین تیمارهای یاد‌شده در سطح احتمال 5 درصد از نظر آماری اختلاف معنی‌داری وجود ندارد. این در حالی است که شدت خسارت آفت در تیمار شاهد در مقایسه با هر دو تیمار ذکرشده بیشتر بود. همچنین، با توجه به نتایج به‌دست‌آمده در زمان برداشت سیب مشخص شد، خسارت کرم‌خوردگی میوه‌ها در تیمارهای کنترل بیولوژیک و شیمیایی به‌ترتیب 76/47 و 73/50 درصد کمتر از تیمار شاهد بود. در نهایت، براساس یافته‌های این پژوهش می‌توان گفت که کنترل بیولوژیک مطلوب کرم سیب با استفاده از زنبور پارازیتوئید T. embryophagum، در صورت رعایت مسائل فنی موضوع از مرحلة انتخاب اکوتیپ‌های بومی مؤثر تا کاربرد و در نهایت، ارزیابی برنامه امکان‌پذیر است.

 تریکوگراما کارایی کنترل بیولوژیک کرم سیب مدل فنولوژیک Al Bitar L, Voigt D, Zebitz CPW, Gorb SN (2010) Attachment ability of the codling moth Cydia pomonella L. to rough substrates. Journal of Insect Physiology 56: 1966-1972. Ebrahimi E, Pintureau B, Shojai M. (1998) Morphological and enzymatic study of the genus Trichogramma in Iran, Applied Entomology and Phytopathology 66(1, 2): 122-141 (In Persian with English summary). Dastqeib N, Seyedoleslamy H (1988) Forecasting codling moth, Laspeyresia pomonella L., phenology in west Esfahan apple orchards based on effective temperature calculation. Applied Entomology and Phytopathology 54: 25-43. (In Persian with English Summary) Dolstad KD (1985) Biology and control of the codling moth in the Pacific Northwest. BSc Thesis, Simon Fraser University. Esmaili M (1991) Important Pests of Fruit Trees. Nashr-e-Sepehr Publication, Tehran. (In Persian) Esmaili M, Mirkarimi AA, Azmayesh Fard P (1993) Agricultural Entomology, Destructive Insects, Mites, Rodents, Molusks and their Control. Tehran University Publication, No. 2073. (In Persian) Falcon LA, Pickel C (1976) Manual for 1976 field validation of bug off codling moth forecasting program. University of California, Berkeley. Falcon LA, Pickel C, White JB (1976) Computerizing codling moth. Fruit Grower 96: 8-14. Geier PW, Briese DT (1978) The demographic performance of a laboratory strain of codling moth, Cydia pomonella (Lepidoptera: Tortricidae). Journal of Applied Ecology 15: 679-696. Hassan SA (1989) Selection of suitable Trichogramma strains to control the codling moth Cydia pomonella and the two summer fruit tortrix moths Adoxophyes orana, Pandemis heparana (Lep.: Tortricidae). BioControl  34(1): 19-27. Hassan SA, Kohler E, Rost WM (1988) Mass production and utilization of Trichogramma : 10. Control of the codling moth Cydia pomonella and the summer fruit tortrix moth Adoxophyes orana (Lep.: Tortricidae). BioControl 33(4): 413-420. Howell JF, Neven LG (2000) Physiological development time and zero development temperature of the codling moth (Lepidoptera: Tortricidae). Environmental Entomology 29: 766-772. Mashhadi Jafarloo M, Bayat Asadi H, Talebi Chaichi P (1998) Report on potentiality of Trichogramma spp. in egg parasitism of codling moth (Laspeyresia pomonella L.) in East Azarbaijan province. In: 13th Iranian Plant Protection Congress, 23-27 August, Karaj Junior College of Agriculture, Karaj, Iran, 160. Mills MJ (2003) Augmentation in orchards: Improving the efficiency of Trichogramma inundation. In: 1st International Symposium on Biological Control of Arthropods Honolulu, Hawaii, USA, January 14-18, 2002. 130-135. Mills N (2005) Selecting effective parasitoids for biological control introductions: Codling moth as a case study, Biological Control 34: 274-282. Mills N, Pickel C, Mansfield S, McDougall S, Buchner R, Caprile J, Edstrom J, Elkins R, Hasey J, Kelley K, Krueger B, Olson B, Stocker R (2000) Mass releases of Trichogramma wasps can reduce damage from codling moth. California Agriculture 54(6): 22-25. Oloumi-Sadeghi H, Esmaili M (1980) Population fluctuation study of the codling moth, Laspeyresia pomonella (L.) to determine the best time of control, Iranian Journal of Agricultural Science 3 (1-4) 83-112. (In Persian) Pitcairn MJ, Zalom FG, Rice RE (1992) Degree-day forecasting of generation time of Cydia pomonella (Lepidoptera: Tortricidae) population in California. Environmental Entomology 21: 441-446. Radjabi Gh (1986) Insects Attacking Rosaceous Fruit Trees in Iran. Vol. 2: Lepidoptera. Publication of Plant Pest and Disease Research Institute, Tehran, Iran. (In Persian) Ranjbar Aghdam H (2009) Using temperature-dependent phenology in providing forecasting model of codling moth (Lepidiotera: Tortricidae), PhD dissertation, Tarbiat Modares University, Tehran. (In Persian with English Summary) Ranjbar Aghdam H (2013) Using mathematical models to estimate lower thermal threshold and thermal requirement of the established codling moth populations in Western Azerbaijan, Esfahan and Tehran provinces, Final Report of Research Project, Iranian Research Institute of Plant Protection, Tehran. 49. (In Persian with English Summary) Ranjbar Aghdam H, Fathipour Y, Kontodimas DC, Radjabi Gh, Rezapanah M (2009a) Age-specific life table parameters and survivorship of an Iranian population of the codling moth (Lepidoptera: Tortricidae) at different constant temperatures. Annals of the Entomological Society of America 102: 233-240. Ranjbar Aghdam H, Fathipour, Y, Radjabi Gh, Rezapanah M (2009b) Temperature–dependent development and thermal thresholds of codling moth (Lepidoptera: Tortricidae) in Iran. Environmental Entomology 38: 885-895. Riedl H (1983) Analysis of codling moth phenology in relation to latitude, climate, and food availability, In: Brown VK and Hodek I (Eds.), Diapause and life cycle strategies in insects. Dr. W. Junk Publication, Boston. pp. 223-252. Riedl H, Croft BA (1978) The effects of photoperiodic and effective temperatures on the seasonal phenology of the codling moth (Lepidoptera: Tortricidae). Canadian Entomologists 110: 455-470. Rock GC, Shaffer PL (1983) Development rates of codling moth (Lepidoptera: Olethreutidae) reared on apple at four constant temperatures. Environmental Entomology 12: 831-834. Rowshandel S, Maleki-Milani H, Talebi-Chaichi P (1998) Introduction predators and parasitoids of codling moth Laspeyresia pomonella L. in Khosrowshahr. In: 13th Iranian Plant Protection Congress, 23-27 August, Karaj Junior College of Agriculture, Karaj, Iran, 129.  Setyobudi L (1989) Seasonality of codling moth, Cydia pomonella (Lepidoptera: Olethreutidae) in the Willamette valley of Oregon: role of photoperiod and temperature. PhD dissertation, Oregon State University. Tauber MJ, Tauber CA, Masaki S (1986) Seasonal Adaptations of Insects. Oxford Universty Press, New York. Taylor F (1981) Ecology and evolution of physiological time in insects. The American Naturalist 117: 1-23.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2014.53381 کنترل بیولوژیک بیمایهای گیاهی تولید و کاربرد Trichoderma harzianum Tr6 در کنترل مرگ گیاهچه ناشی از Phytophthora drechsleri و افزایش رشد در خیار تولید و کاربرد Trichoderma harzianum Tr6 در کنترل مرگ گیاهچه ناشی از Phytophthora drechsleri و افزایش رشد در خیار دلخواه ژیلا دانشجوی کارشناسی ارشد، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج بهبودی کیوان دانشیار، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج 23 09 2014 3 2 97 104 13 01 2015 09 02 2015 Copyright © 2014, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2014 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_53381.html

جنس تریکودرما یکی از عوامل مهم بیوکنترلی در برخی بیماری‌های گیاهی است که با مکانیسم‌های مختلفی بیماری را کنترل می‌کند. این قارچ‌ همانند دیگر عوامل کنترل بیولوژیک تحت تأثیر فاکتورهای محیطی قرار می‌گیرد که محیط کشت از جملة این فاکتورها است. این تحقیق با هدف ارزیابی تأثیر ترکیب ملاس چغندر قند، شربت ذرت، مخمر نان و عصارة مالت (Mol.C.B.M.) به‌عنوان محیط کشت مایع، دانة گندم (W.s.) و سبوس گندم  (W.b.)به‌عنوان محیط‌های کشت جامد بر توان اسپوردهی، کنترل مرگ گیاهچه ناشی از Phytophthora drechsleri و توسعة رشد گیاهچة خیار توسط Trichoderma harzianum Tr6 انجام شد. محیط‌های کشت با 1 میلی‌لیتر سوسپانسیون اسپور آنتاگونیست با غلظت 108 اسپور تلقیح و سپس، در دمای 28 درجة سلسیوس و شدت نور فلورسنت 206 لوکس به‌مدت 10روز نگه‌داری شدند. تیمار مربوط به محیط کشت Mol.C.B.M. بیشترین توان اسپورزایی با میزان 1010×83/1 اسپور در هر گرم وزن خشک زیست‌تودة آنتاگونیست و نیز بیشترین درصد کنترل بیماری (5/62 درصد)، افزایش ارتفاع، وزن تر و خشک اندم‌های هوایی و ریشة گیاهچه را نشان داد؛ اما درصد بازدارندگی در شرایط آزمایشگاهی نسبت به محیط‌های کشت جامد کمتر بود. بنابراین، می‌توان گفت که محیط کشت مایع برای دستیابی به اهداف تحقیق، موفق عمل کرده است.

 اسپورزایی آنتاگونیست تریکودرما سبوس گندم محیط کشت H (2013) Comparative evaluation of induced resistance by Trichoderma,fluorescent pseudomonads and their combination against fusarium stem and root rot of cucumber and expression of some defense genes. Ph.D., University of Tehran, Iran. (In Persian). Altomare C, Norvell WA, Bjorkman T and Harman GE (1999) Solubilization of phosphates and micronutrients by the plant-growth promoting and biocontrol fungus Trichoderma harzianum rifai 1295-22. Applied and Environmental Microbiology 65: 2926-2933. Bae H (2011) Trichoderma Species as abiotic and biotic stress quenchers in plants. Research Journal of Biotechnology 6. Benitez T, Rincon AM, Limon MC and Codon AC (2004) Biocontrol mechanisms of Trichoderma strains. International Microbiology 4: 249-260. Chaudhari PJ, Shrivastava P and Khadse AC (2011) Substrate evaluation for mass cultivation of Trichoderma viride. Asiatic Journal of Biotechnology Resources 4: 441-446. Chang YC, Baker R, Kleifeld O and Chet I (1986) Increased growth of plants in the presence of the biological control agent T. harzianum. Plant Disease 70: 145-148. Contreras-Cornejo HA, Macı´as-Rodrı´guez L, Corte´s-Penagos C and Lo´pez-Bucio J (2009) Trichoderma virens, a plant beneficial fungus, enhances biomass production and promotes lateral root growth through an auxin-dependent mechanism in Arabidopsis. Plant Physiology 149: 1579–1592. Dennis C and Webster J (1971a) Antagonism properties of species groups of Trichoderma, III. Hyphal interaction. Transactions British Mycological Society 57:363-369. Dennis C and Webster J (1971b) Antagonistic properties of species groups of Trichoderma production of volatile antibiotics. Transactions British Mycological 57: 41-48. Gravel V, Antoun V and Tweddell RJ (2007) Growth stimulation and fruit yield improvement of greenhouse tomato plants by inoculation with Pseudomonas putida or Trichoderma atroviride: possible role of indoleacetic acid (IAA). Soil Biology and Biochemistry 39: 1968-1977. Harman GE (2006) Overview of mechanisms and uses of Trichoderma spp. Phytopathology 96: 190-194. Hwang J and Benson DM (2005) Identification, mefenoxam sensitivity, and compatibility type of Phytophthora spp. attacking floriculture crops in North Carolina. Plant Disease 89: 185-190. Kleifeld O and Chet I (1992) Trichoderma harzianum interaction with plants and effects on growth response. Plant Soil 144: 267-272. Lagzian A (2013) Optimization of growth conditious of Pseudomonas fluorescens VUPF5 for increasing its biocontrol ability. M.Sc., Vali-E-Asr University of Rafsanjan. Iran. (In Persian). Lawford HG and Rousseau JD (1997) Corn steep liquor as a cost-effective nutrition adjunct in high-performance zymomonas ethanol fermentations. Applied Biochemistry and Biotechnology 63-65: 287-304. Lewis JA and Papavizas GC (1983) Production of chlamydospores and conidia by Trichoderma spp. in liquid and solid growth media. Soil Biology and Biochemistry 3: 351-357. Lewis JA and Papavizas GC (1991) Biocontrol of plant diseases: The approach for tomorrow. Crop Protection 10: 95-102. Monga D (2001) Effect of carbon and nitrogen sources on spore germination, biomass production and antifungal metabolites by species of Trichoderma and Gliocladium. Indian Phytopathology 4: 435-437. Monte E (2001) Understanding Trichoderma: between biotechnology and microbial ecology. International Microbiology 4: 1-4. Morton AG (1961) The induction of sporulation in mold fungi, Proceeding of the Royal Microscopical Society 2: 548-569. Papavizas GC and Lewis JA (1981) Introduction and augmentation of microbial antagonists for the control of soilborne plant pathogens, In: Papavizas GC (ed.), In Biological Control in Crop Production. Allanheld Osmun & Co., Totowa, New Jersey., pp. 305-322. Qusley MA, Lynch JM and Whipps JM (1994) The effects of addition of Trichoderma inocula on flowering and shoot growth of bedding plants. Scientia Horticulturae 59: 147-155. Radwan MB, Fadel AM and Mohammad IAM (2006) Biological control of Sclerotiorum rolfsii by using indigenous  Trichoderma spp. isolates from Palestine. Hebron University Research Journal 2: 27-47. Ramanujam B, Prasad RD, Sriram S and Rangeswaran R (2010) Mass production, formulation, quality control and delivery of Trichoderma for plant disease management. Journal of Plant Protection Sciences 2: 1-8. Rosane SC, Helder LSL, Gustavo ASP, Carlos ATG and Sueli R (2008) Effect of moisture on Trichoderma conidia production on corn and wheat bran by solid state fermentation. Food Bioprocess Technology 1: 100-104. Sargin S, Gezgin Y, Eltem R and Vardar F (2013) Micropropagule production from Trichoderma harzianum EGE-K38 using solid-state fermentation and a comparative study for drying methods. Turkish Journal of Biology 37: 139-146. Shirzad A, Fallahzadeh-Mamaghani V and Pazhouhandeh M (2012) Antagonistic potential of fluorescent pseudomonads and control of crown and root rot of cucumber caused by Phythophtora drechsleri. Plant Pathology Journal 28: 1-9. Steyaert JM, Weld RJ, Mendoza-Mendoza A and Stewart A (2010) Reproduction without sex: conidiation in the filamentous fungus Trichoderma. Microbiology 156: 2887-2900. Subash N, Meenakshisundaram M, Sasikumar C and Unnamalia N (2014) Mass cultivation of Trichoderma harzianum using agricultural waste as a substrate for the management of damping off disease and growth promoting in chili plants (Capsicumannuum L.). International Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences 5. Verma M, Satinder KB, Tyagi RD, Surampalli RY and Valeró JR (2007) Starch industry wastewater as substrate for antagonist, Trichoderma viride production. Bioresource Technology 98: 2154-2162.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2014.53466 کنترل بیولوژیک بیمایهای گیاهی بررسی ویژگی‌های زیستی باکتریPseudomonas fluorescens UTPF68 و ارزیابی توان بیوکنترلی آن علیه Phytophthora drechsleri عامل بوته‌میری خیار قافله باشی سمیه السادات دانش‌آموختة کارشناسی ارشد، گروه گیاه‌پزشکی، دانشکدة علوم و مهندسی کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج جمالی فاطمه استادیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدة کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه خلیج فارس بوشهر احمدزاده مسعود استاد، گروه گیاه‌پزشکی، دانشکدة علوم و مهندسی کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج 23 09 2014 3 2 105 116 27 09 2014 22 04 2015 Copyright © 2014, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2014 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_53466.html

در این تحقیق از باکتری Pseudomonas fluorescens UTPF68، عامل کنترل بیولوژیک، علیه Phytophthora drechsleri استفاده شد. ترکیبات فرّار سویة UTPF68 در سه محیط کشت NA، NAG و PDA به‌ترتیب 44/84 درصد، 55/83 درصد و 33/67 درصد بازدارندگی از رشد میسیلیومی P. drechsleri را در برداشت. نتایج نشان داد که متابولیت‌های خارج‌سلولی تولیدشده توسط سویة UTPF68 در محیط کشت PDA به‌طور کامل از رشد P. drechsleri ممانعت و در محیط کشت CMA به میزان 3/93 درصد از رشد بیمارگر جلوگیری کرد. سلول و عصارة سویة UTPF68 در سه غلظت 10 درصد، 25 درصد و 50 درصد، درون محیط مایع، به‌طور کامل از رشد P. drechsleriجلوگیری کرد. همچنین، این باکتری توانست هر سه آنتی‌بیوتیک DAPG، MAPG و Plt را در محیط کشت KBG تولید کند. نتایج نشان داد که این باکتری می‌تواند هر دو شرایط in vitro و in vivo را به کنترل P. drechsleri درآورد؛ به‌طوری که، کاربرد غلظت 108 سلول در هر میلی‌لیتر از این باکتری در خاک، خسارت ناشی از این بیمارگر را تا 60 درصد کاهش داد. مایه‌زنی این باکتری با خاک در حضور و نبود بیمارگر باعث بهبود فاکتورهای رشدی گیاه تحت شرایط گلخانه شد. به‌طوری که، از این لحاظ با شاهد سالم تفاوت معنی‌داری نشان داد. بررسی کلونیزاسیون ریشة خیار نشان داد که این باکتری بعد از گذشت دو هفته، توانست منطقة ریزوسفر با جمعیت 109×3/2 در گرم ریشه را کلونیزه‌ کند.

 آنتی‌بیوتیک عصارة سلولی کلونیزاسیون کنترل بیولوژیک متابولیت‌های خارج‌سلولی Ahmadzadeh M , Ghasemi S (2012) Introduction of Pseudomonas fluorescens as a new biocontrol agent in Iran. Biological Control of Pests and Plant Diseases 1: 49-60. (In Persian). Alavi A (1973) Root rot disease of cucumbers. Iranian Journal of Plant Pathology 9: 37-49 (In Persian). Azad Disfani F (2001) Effect of some antagonistic bacteria against Verticillium dahlia, Cotton wilt disease. M.Sc., Tehran University, University College of Agricultural and Natural Resources, Iran. (In Persian). Bangera M G & Thomashow LS (1999) Identification and characterization of a gene cluster for synthesis of the polyketide antibiotic 2, 4-diacetylphloroglucinol from Pseudomonas fluorescens Q2-87. Journal of Bacteriology 181(10): 3155-3163. Baligh M, Delgado MA, Conway KE (1999) Evaluation of Burkholderia cepacia strains: Root colonization of Catharanthus roseus and in vitro inhibitation of selected soil-born fungal pathogens. Proceedings of the Oklahoma Academy of Science 79: 19-27. Castric KF , Castric P (1983) Method for rapid detection of cyanogenic bacteria. Applied and Environmental Microbiology 45: 701-702. Chin-A-Woeng TFC, Priester AJV , Lugtenberg BJJ (1997) Description of colonization of a gnotobiotic tomato rhizosphere by Pseudomonas fluorescens biocontrol strain WCS365, using scanning electron microscopy. Molecular Plant-Microbe Interactions Journal 10:79-86. De Lafuente L, Quagliotto L, Bajsa N, Fabiano E, Altier N, Arias A (2001) Inoculation with Pseudomonas fluorescens biocontrol strains does not affect the symbiosis between rhizobia and forage legumes. Soil Biology and Biochemistry 34: 545–548. Duffy BK & Défago G (1999) Environmental factors modulating antibiotic and siderophore biosynthesis by Pseudomonas fluorescens biocontrol strains. Applied & Environmental Microbiology 65(6): 2429-2438. Ershad J, Mostofipour P (1969) Root rot of cucurbits in Iran. Iranian Journal of Plant Pathology 5: 38-45 (In Persian). Ghafelebashi S (2012) Optimization of culture conditions of Pseudomonas fluorescens UTPF68 using the response surface methodology. M.Sc., University of Tehran, University College of Agricultural and Natural Resources, Iran. (In Persian). Hagedron C, Gould WD, Bradinelli RT (1989) Rhizobacteria of cotton and their repression of seedling disease pathogens. Applied and Environmental Microbiology 55: 279-2797. Howell CR & Stipanovic RD (1980) Suppression of Pythium ultimum induced damping-off of cotton seedlings by Pseudomonas fluorescens and its antibiotic, pyoluteorin. Phytopathology 70(8): 712-715. Hwang J, Beneson DM (2005) Identification, sensitivity and compatibility types of Phytophthora spp. attacking floricultur crops in North Carolina. Plant Disease 89: 185-190. Jamali F (2009) Influence of some biotic factors on the expression of hydrogen cyanide- and 2, 4- diacetylphloroglucinol biosynthesis genes in Pseudomonas fluorescens on bean rhizosphere. Ph. D., dissertation, University of Tehran, University College of Agricultural and Natural Resources, Iran, (In Persian). Keel C, Defago G (1997) Interaction between beneficial soil bacteria and root pathogens: mechanism and ecological impact In: Gange, A.C. and Brown, V. K. (eds.). multitrophic interaction in terrestrial system pp. 27-46. Blackwell Scientific publishers, London, U.K. Kim E, Hwang BK (1992) Virulence to Korean pepper cultivars of isolates of Phytophthora capsici from different geographic areas. Plant Disease76: 486-489. Kraus L & Loper JE (1992) Lack of evidence for a role of antifungal metabolite production by Pseudomonas fluorescens Pf-5 in biological control of Pythium damping-off of cucumber. Phytopathology 82(3): 264-271. Lemanceau P, Corberand T, Gardan L, Latour L, Laguerre G, Boeufgras J M, Albouvette C (1995) Effect of two plant species flax (Linum usitatissinum L.) and tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) on the diversity of soilborne populations of fluorescent pseudomonads. Applied & Environmental Microbiology 61(3): 1004-1012. Liu L, Kloepper JW, Tuzun S (1995) Introduction of systemic resistance in cucumber against Fusarium wilt by plant growth-promoting rhizobacteria. Phytopathology. 85: 695-698. Maurhofer M, Keel C, Schnider U, Voisard C, Défago G (1992) Influence of enhanced antibiotic production in Pseudomonas fluorescens strain CHA0 on its disease suppressive capacity. Phytopathology 82(2): 190-195. Maurhofer M, Keel C, Haas D, Défago G (1994) Pyoluteorin production by Pseudomonas fluorescens strain CHA0 is involved in the suppression of Pythium damping-off of cress, but not cucumber. European Journal of Plant Pathology 100(3, 4): 221-232. Notz R, Maurhofer M, Schnider-Keel U, Duffy B, Haas D, Défago G (2001) Biotic factors affecting expression of the 2,4-diacetylphloroglucinol biosynthesis gene phlA in Pseudomonas fluorescens biocontrol strain CHA0 in the rhizosphere. Phytopathology 91(9): 873-881. Rabindran R, Vidhysaekaran P (1996) Development for formulation of Pseudomonasfluorescens PfALR2 for management of rice sheath blight. Crop Protection 15(8): 715- 721. Savchuk S, Fernando WGD, Park PS (2001) Potential for biocontrol of Sclerotiniasclerotiorum on canola. Canadian Journal of Plant Pathology 23:205. Sperber JI (1958) the incidence of apatite-solubilizing oranisms in the rhizorsrhere and soil. Australian Journal of Agriculture Reearch 9: 778. Tucker C M (1931) Taxonomy of the genus Phytophthora de Bary. University of Missouri Agricultural Experimental Station Research Bulletin 153- 158 pp. Vessey KJ (2003) Plant growth- promoting rhizobacteria as biofertilizers. Plant Soil 255: 571-580. Wuthrich B, Defago G (1990) Suppression of wheat take-all and black root rot of tobacco by Pseudomonas fluorescens strain CHA0: results field and pot experiments pp. 17-22. In: Keel, C., Koller, B. and Defago, G. (eds.). Plant Growth Promoting rhizobacteria. The second international workshop on plant growth promoting rhizobacteria. Interlacen, Switzerland. Phytopatholgy 68:1377-1383. Yan Z, Reddy MS, Kloepper JW (2003) Survival and colonization of rhizobacteria in a tomato transplant system. Canadian Journal of Microbiology 49: 383-389.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2014.53672 کنترل بیولوژیک بیمایهای گیاهی کنترل بیولوژیک نماتدMeloidogyne javanica توسط دو عامل آنتاگونیست Pseudomonas fluorescens CHA0, Trichoderm harzianum BI در گیاه گوجه‌فرنگی کنترل بیولوژیک نماتدMeloidogyne javanica توسط دو عامل آنتاگونیست Pseudomonas fluorescens CHA0, Trichoderm harzianum BI در گیاه گوجه‌فرنگی مختاری سمیه کارشناسی ارشد (مربی)، دانشگاه خلیج فارس صاحبانی نوازاله دانشیار، پردیس ابوریحان دانشگاه تهران اعتباریان حسن رضا استادیار، پردیس ابوریحان دانشگاه تهران 23 09 2014 3 2 117 126 29 04 2014 07 02 2015 Copyright © 2014, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2014 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_53672.html

  نماتدهای مولد گره ریشه (.Meloidogyne spp) از مهم‌ترین نماتدهای پارازیت گیاهی می‌باشند که باعث ایجاد خسارت روی اکثر گونه‌های گیاهی می‌شود. در این تحقیق به بررسی اثر دو عامل آنتاگونیستی Trichoderma  harzianum BI وPseudomonas fluorescens CHA0 در کنترل بیولوژیک نماتد مولد گره ریشه و بررسی تغییرات فعالیت آنزیم پراکسیداز و پلی‌فنل اکسیداز در طی پدیده القای مقاومت پرداخته شد. نتایج نشان داد که استفاده از این قارچ و باکتری به طور تلفیقی موجب کاهش معنی‌دار در فاکتورهای بیماریزایی نماتد نسبت به تیمار باکتری تنها و شاهد (نماتد) گردید. اما این تیمار تلفیقی با تیمار قارچ تنها در کلیه فاکتورها تفاوت معنی‌داری نشان نداد. نتایج بررسی فعالیت آنزیم پراکسیداز در ریشه گیاه در تیمارهای مشابه نشان داد که تغییرات فعالیت این آنزیم از روز اول افزایش نشان داد و در روز چهارم به اوج خود رسید و سرانجام در روزهای بعد فعالیت این آنزیم کاهش پیدا کرد بیشترین فعالیت آنزیم پراکسیداز مربوط به تیمار قارچ +باکتری بود که تفاوت معنی‌داری با فعالیت آنزیم در تیمار باکتری نداشت. همچنین در بررسی فعالیت آنزیم پلی‌فنل اکسیداز مشاهده شد که اوج فعالیت این آنزیم در تیمار قارچ+باکتری طی روز پنجم بعد از مایه‌کوبی نماتد بود که دارای تفاوت معنی‌داری با بقیه تیمارها بود. بنابراین هر دو عامل قادر به القا آنزیم دفاعی پراکسیداز و پلی‌فنل اکسیداز به طور سیستمیک در کل گیاه از جمله ریشه شده و بدین طریق مانع از فعالیت نماتد مولد گره ریشه می‌شود.

 نماتد مولد گره ریشه Pseudomonas fluorescens CHA0 Trichoderma harzianum BI القای مقاومت سیستمیک Bradford MM (1976) A rapid and sensitive method for the quantification of microgram quantities of protein utilization the principle of protein–dye binding. Analytical Biochemistry 72: 248-254. Gorlach J, Volrath S, Knoauf-Better G, Hgngy G, Beckhove U, Kogel K, Oostendort M, Staub T, Ward E, Kessmann H, Ryals J (1996) Benzothiadiazole, novel class inducers of systemic acquired resistance, activated gene expression and disease resistance in wheat. Plant Cell 8: 629-643. Hussay RS, Barker KR (1973) Comparison of methods of collecting inoculate of Meloidogyne spp. including a new technique. Plant Disease Reporter 57:1025-1028. Ibrahim SK (1991) Peroxidase isoenzymes from Meloidogyne spp. cultured of different hosts. Revue de Nématologie 143:335-344 Jepson SB (1987) Identification of Root-Knot Nematodes (Meloidogyne species). Wallingford UK, C.A.B. Interactional. 256pp. Kosuge T (1969) The role of photonics in host response to infection. Annual Review of Phytopathology 7: 195-222. Ku HS, Yang SF, Pratt HK (1970) Ethylene production and peroxidase activity during tomato fruit ripening. Plant Cell Physiology (Tokyo) 11: 241-246. LaemmliUK (1976) Cleavage of structural proteins during the assembly of the bead of bacteriophage. Nature 227: 680-685. Lyr H (1965) On the toxicity of oxidized polyphones. Journal of Phytopathology 52: 229-240. Mader M, Fussl R (1982) Role of peroxidase in lignification of tobacco cells. Plant Physiology 70: 1132-1134. Mahdikhani Moghadam E, Rouhani H, Flahi M (2009) Biological control of sugar beet cyst forming nematode with trichoderma under in vitro and green house condition. Journal of Science and Technology of Agriculture and Natural Resources 13(48): 301-312). Maleki Ziarati H, Roustaee A, Sahebani N, Etebarian HR, Aminian H (2009) Study of biological control of root-knot nematode, Meloidogyne javanica (Trube) chitwood, in tomato by Trichoderma harzianum Rifai in greenhouse and quantitative changes of phenolic compounds in plant. Seed and Plant Production Journal 25: 259-272. (In Persian). Meyer SLF, Roberts DP, Chitwood DJ, Carta LK, Lumsden RD, Mao W (2001) Application of Burkholderia cepacia and Trichoderma virens alone and in combination, against M. incognita  on bell pepper. Nematropica 31: 75-86. Mohammadi M, Kazemi H (2002) Changes in peroxidase and polyphenol oxidase activities in susceptible and resistant wheat heads inoculated with Fusarium graminearum and induced resistance. Plant Science 162: 491-498. Reuveni R (1995) Biochemical marker for disease resistance, In: Singh RP and Singh US (ed), Molecular Methods in Plant Pathology. CRC Press. Boca Raton. FL. pp. 99-144. Ritze M, Rudolph K, Schroder I, Hoffmann-Hergarten S, Hallmann J, Sikora RA (2000) Lipopolysaccharides of Rhizobium etli strain G12 act in potato roots as an inducing agent of systemic resistance to infection by the cyst nematode Globodera pallida. Applied and Environmental Microbiology 66: 3515-3518. Sasser JN (1989) Plant parasitic nematodes: the farmer shidden enemy. A cooperative publication of the department of plant pathology and consortium for International. 115 pp. Schippers B (1992) Prospects for management of natural suppressiveness to control soil borne pathogens, In: Tjamos EC, Papaviza GC, Cook  RJ (ed.), Biological control of plant diseases. Progress and challenges for the Future Plenum Press, New York, NY, USA. pp. 21-34. Sharon E, Bar-Eyal M, Chet I, Herrera-Estrella A, Keleifed O, Spiegel Y (2001) Biological control of the root –knot nematode Meloidogyne javanica by Trichoderma harzianum. Phytopathology 91: 687-693. Siddiqui IA, Ehteshamul-Haque S, Shaukat SS (2001) Use of rhizobacteria in the control of root rot-root knot disease complex of mungbean. Journal of Phytopathology 149: 337-346. Siddiqui IA, Shaukat SS (2004) Trichoderma harzianum enhances the production of nematicidal compounds in vitro and improves biocontrol of Meloidogyne javanica by Pseudomonas fluorescens in tomato. Letters in Applied Microbiology 38: 169-175. Siddiqui IA, Shaukat SS (2003) Combination of Pseudomonas aeruginosa and Pochonia chlamydosporia for control of root –infection fungi in tomato .Phytopathology 151: 215-222. Sikora RA, Hoffmann-Hergarten S (1993) Biological control of plant-parasitic nematodes with plant-health promoting rhizobacteria, in pest management, In: lumsden Redland Vaughn JL(ed), Biologically based technologies, proceeding of Beltsville symposium XVIII, American Chemical Society, Washington. Pp. 166-172. Thompson DC (1996) Evaluation of bacterial antagonists for reduction of summer pateh symptoms in Kentucky blue grass. Plant Disease 80: 850-862. Van-Loon L, Bakker PA (2005) Induced systemic resistance as a mechanism of disease suppression by rhizobacteria. PGPR: Biocontrol and Biofertilization 11: 39-66.    Van-Loon L, Bakker PA, Pieterse CM (1998) Systemic resistance induced by rhizosphere bacteria. Annual Review of Phytopathology 36: 453-483. Williamson VM, Hussay RS (1996) Nematode pathogenesis and resistance in plant. The Plant Cell 8: 1735-1745. Windham GL, Windham MT, Williams WP (1989) Effects of Trichoderma spp. on maize growth and Meloidogyne arenaria reproduction. Plant Disease 73: 493-500. Wojtaszek P (1997) Mechanisms for the generation of reactive oxygen species in plant defense response. Acta Physiologiae Plantarum 19: 581-589.    Yamasaki H, SakihamaY, Ikehara N (1997) Flavonoid-peroxidase reaction as a detoxification mechanism of plant cells against H2O2. Plant Physiology 115: 1405-1412. Zacheo G, Oriando C, Bleve T (1993) Characterization of anionic peroxidase in tomato isolines infected by Meloidogyne incognita. Nematology 25: 249-256.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2014.53673 ترویج و توسعه روش های بیوکنترل کاربرد سیلیکون در القای مقاومت سیستمیک علیه بیماری بلایت فوزاریومی خوشة گندم کاربرد سیلیکون در القای مقاومت سیستمیک علیه بیماری بلایت فوزاریومی خوشة گندم قاضی ‌محسنی وحید دانشجوی کارشناسی ارشد، بیماری‌شناسی گیاهی، گروه گیاه‌پزشکی، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه زابل صباغ سید کاظم استادیار، بیوتکنولوژی گیاهی، گروه گیاه‌پزشکی و پژوهشکدة زیست فناوری گیاهی، دانشگاه زابل اسمعیل زاده بهابادی صدیقه استادیار، گروه زیست‌شناسی، دانشکدة علوم پایه، دانشگاه زابل قربانی مرتضی استادیار، بیماری‌شناسی گیاهی، گروه گیاه‌پزشکی، دانشگاه زابل 23 09 2014 3 2 127 137 19 05 2014 07 02 2015 Copyright © 2014, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2014 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_53673.html

در این تحقیق اثر غلظت‌های مختلف سیلیکون (صفر، 2، 4 و 6 میلی‌مولار) بر بیان چند ژن مرتبط با بیماریزایی و فعالیت تعدادی آنزیم آنتی‌اکسیدان مطالعه شد. گیاهان در مرحلة خوشه‌دهی از طریق محلول خاک تیمار شدند. سپس، گیاهان تیمار‌شده با 1 میلی‌لیتر سوسپانسیون اسپور قارچ حاوی 106 ماکروکنیدی به روش تزریق در زیر محل خوشه، مایه‌زنی شدند و در بازه‌های زمانی صفر، 24، 72 و 120 ساعت پس از تلقیح، برداشت نمونه برای اندازه‌گیری فعالیت آنزیمی و بیان ژن انجام شد. نتایج نشان داد که شدت بیماری در گیاهان تیمار‌شده در مقایسه با شاهد کاهش داشت. آنالیز بیوشیمیایی نشان داد که فعالیت دو آنزیم پراکسیداز و پلی‌فنل اکسیداز در تمام غلظت‌ها افزایش یافت. نتایج آنالیز مولکولی نشان از افزایش سطح بیان ژن‌های بتا ـ 1 و 3 گلوکاناز و اگزالات اکسیداز در گیاهان تحریک‌شده با سیلیکون در غلظت 6 میلی‌مولار در بازة زمانی 120 ساعت بعد از مایه‌زنی داشت. به‌طور کلی، نتایج این تحقیق نشان می‌دهد که سیلیکون می‌تواند مقاومت گیاهان در برابر عوامل بیماریزای قارچی را از طریق مقاومت اکتسابی سیستمیک افزایش دهد.

 بیان ژن سیلیکون فوزاریوز .qRT-PCR Bernardo A, Bai G, Guo P, Xiao K, Guenzi AC, Ayoubi P (2007) Fusarium graminearum-induced changes in gene expression between Fusarium head blight-resistant and susceptible wheat cultivars. Functional and integrative genomics 7: 69-77. Bottalico A, Perrone G (2002) Toxigenic Fusarium species and mycotoxins associated with head blight in small-grain cereals in Europe. European Journal of Plant Pathology 8: 614-624 Brunings A M, Datnoff LE, Ma JF, Mitani N, Nagamura Y, Rathinasabapathi B. Kirst M (2009) Differential gene expression of rice in response to silicon and rice blast fungus Magnaporthe oryzae. Annals of Applied Biology 155: 161-170. Cai K, Gao D, Chen J, Luo S (2009) Probing the mechanisms of silicon-mediated pathogen resistance. Plant Signal Behav 4:1-3. Chain F, Côté-Beaulieu C, Belzile F, Menzies J, Bélanger R (2009) A comprehensive transcriptomic analysis of the effect of silicon on wheat plants under control and pathogen stress conditions. Molecular plant-microbe interactions 22: 1323-1330. Chen C, Belanger RR, Benhamou N, Paulitz TC (2000) Defense enzymes induced in cucumber roots by treatment with plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR) and Pythium aphanidermatum. Physiological and Molecular Plant Pathology 13: 23-56. Chérif M, Asselin A, Bélanger R (1994) Defense responses induced by soluble silicon in cucumber roots infected by Pythium spp. Phytopathology 84: 236-342. Datnoff L, Deren C, Snyder G (1997) Silicon fertilization for disease management of rice in Florida. Crop Protection 16: 525-531. De Azevedo Neto AD, Prisco JT, Enéas-Filho J, Abreu C, Gomes-Filho E (2006) Effect of salt stress on antioxidative enzymes and lipid peroxidation in leaves and roots of salt-tolerant and salt-sensitive maize genotypes. Environmental and Experimental Botany 56: 87-94. Diogo RV, Wydra K (2007) Silicon-induced basal resistance in tomato against Ralstonia solanacearum is related to modification of pectic cell wall polysaccharide structure. Physiological and Molecular Plant Pathology 70: 120-129. Dunwell JM, Khuri S, Gane PJ (2000) Microbial relatives of the seed storage proteins of higher plants: conservation of structure and diversification of function during evolution of the cupin superfamily. Microbiology and Molecular Biology Review 64: 153-179. Eder J,  Cosio EG (1994). Elicitors of Plant Defense Responses. In: Kwang WJ, Jonathan J (eds), International Review of ytology. Academic Press, London. pp. 1-36. Epstein E (2001) Silicon in plants: facts vs. concepts. In: Datnoff LE, Snyder GH Korndöfer GH )eds.). Silicon in Agriculture. 1th edt. Elsevier, Amsterdam. PP.1-16. Fauteux F, Rémus-Borel W, Menzies JG, Bélanger RR (2005) Silicon and plant disease resistance against pathogenic fungi. FEMS Microbiology Letter 1: 241-246. Gillman JH, Zlesak DC, Smith JA (2003) Applications of potassium silicate decrease black spot infection in rosa hybrida meipelta'(Fuschia Meidiland™). HortScience 38: 147-1147. Hattori T, Inanaga S, Araki H, An P, Morita S, Luxová M, Lux A (2005) Application of silicon enhanced drought tolerance in Sorghum bicolor. Physiologia Plantarum 123: 459-466. Ones R (2000) Assessments of Fusarium head blight of wheat and barley in response to fungicide treatment. Plant Disease 84: 1021-1030. Leah R, Tommerup H, Svendsen I, Mundy J (1991) Biochemical and molecular characterization of three barley seed proteins with antifungal properties. Journal of Biological Chemistry 226: 1564-1573. Ma JF, Yamaji N, Mitani N, Tamai K, Konishi S, Fujiwara T, Katsuhara M, Yano M (2007) An efflux transporter of silicon in rice. Nature 448: 209-212. Mackintosh CA, Lewis J, Radmer LE, Shin S, Heinen S. J, Smith L. A, Wyckoff MN, Dill-Macky R, Evans CK, Kravchenko S (2007) Overexpression of defense response genes in transgenic wheat enhances resistance to Fusarium head blight. Plant cell reports 26: 479-488. Mayer AM (2006) Polyphenol oxidases in plants and fungi: Going places? A review. Phytochemistr. 67: 2231-2238. Mitani N, Ma JF (2005) Uptake system of silicon in different plant species. Journal of Experimental Botany 56: 1255-1261. Siranidou E, Kang Z, Buchenauer H (2002) Studies on symptom development, phenolic compounds and morphological defence responses in wheat cultivars differing in resistance to Fusarium head blight. Journal of Phytopathology 150: 200-208. Stack RW, McMullen MP (2010) A visual scale to estimate severity of Fusarium head blight in wheat. 1th ed. North Dakota State University press. Dakota. Strange R, Deramo A, Smith H (1987) Virulence enhancement of  Fusarium graminearum by choline and betaine and of Botrytis cinerea by other constituents of wheat germ. Transactions of the British Mycological Society 70: 201-207. Van Loon L, Van Strien E (1999) The families of pathogenesis-related proteins, their activities, and comparative analysis of PR-1 type proteins. Physiological and Molecular Plant Pathology 55: 85-97. Vlot AC, Klessig F, Park SW (2008) Systemic acquired resistance: the elusive signal (s). Current opinion in plant bioloy11: 422-436. Walters DR, Avrova A, Bingham IJ, Burnett FJ Fountaine J, Havis ND, Hoad SP, Hughes G, Looseley M, Oxley SJ (2012) Control of foliar diseases in barley: towards an integrated approach. European Journal of Plant Pathology 73: 133-137. Windels CE (2000) Economic and social impacts of Fusarium head blight: changing farms and rural communities in the Northern Great Plains. Phytopathology 90: 17-21.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2014.53674 کنترل بیولوژیک بیمایهای گیاهی مقایسة اثر محیط‌های کشت آلی روی میزان جمعیت تیپ وحشی و تیپ جهش‌یافتة باکتری بیوکنترل Pseudomonas fluorescens VUPf5 مقایسة اثر محیط‌های کشت آلی روی میزان جمعیت تیپ وحشی و تیپ جهش‌یافتة باکتری بیوکنترل Pseudomonas fluorescens VUPf5 لگزیان آرزو دانشجویان سابق کارشناسی ارشد، استادیاران بیماری‌شناسی گیاهی، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه ولی‌عصر(عج) رفسنجان صابری‌ریسه روح اله دانشجویان سابق کارشناسی ارشد، استادیاران بیماری‌شناسی گیاهی، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه ولی‌عصر(عج) رفسنجان خدایگان پژمان دانشجویان سابق کارشناسی ارشد، استادیاران بیماری‌شناسی گیاهی، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه ولی‌عصر(عج) رفسنجان 23 09 2014 3 2 139 150 31 12 2014 13 04 2015 Copyright © 2014, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2014 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_53674.html

در این تحقیق رشد دو سویة باکتریPseudomonas fluorescens VUPf5 و fluorescens VUPf5-1 P. (باکتری جهش‌یافتة مشابه جهش‌یافتة سیستم تنظیمی gac) در محیط‌های کشت آلی ارزیابی شد. این جهش خودبه‌خودی تولید ترکیبات ضد قارچی سیانید هیدروژن، آنتی‌بیوتیک فنازین و آنزیم پروتئاز را در سویة بیوکنترل Pseudomonas fluorescens VUPf5 متوقف کرد. با استفاده از محیط‌های کشت آلی همراه یا بدون سولفات روی سعی شد که جمعیت جهش‌یافته‌ها تا حد امکان کاهش یابد. با هدف افزایش رشد جمعیت VUPf5 و کاهش رشد جمعیت VUPf5-1، شش منبع کربنی (ملاس چغندرقند، نشاسته، سیب‌زمینی، خرما، شکر، سیب) ،سه منبع ازتی (سویا، اوره، سولفات آمونیوم) و یک منبع کربنی ـ ازتی (جوانة گندم) بررسی شدند. محیط کشت 13B (ملاس چغندرقند، جوانة گندم، سویا، شکر، سیب و سولفات منگنز)، محیط کشت بهتری از لحاظ جمعیت باکتری VUPf5 (1010× 56/5 سلول باکتری در هر میلی‌لیتر) در مقایسه با محیط‌های کشت دیگر شناخته شد و اختلاف جمعیت باکتری در مقایسه با سایر محیط‌ها معنی‌دار بود. محیط کشت 1D (ملاس چغندرقند، جوانة گندم، سویا، شکر، سیب و سولفات روی) سبب کاهش چشمگیری در تکثیر پرگنه‌های جهش‌یافته شد. نتایج به‌دست‌آمده می‌تواند مبنای قابل اعتمادی برای تکثیر بهینة عامل بیوکنترل در فرایند‌های فرمانتاسیون را فراهم کند.

 بهینه‌سازی تکثیر جهش‌یافته سودوموناس Ahmed LF, Rezq AA, Atti MRA (2010)Additional effect of defatted wheat germ protein isolate on nutritional value and functional properties of yogurts and biscuits. Australian Journal of Basic and Applied Sciences 4(8): 3139-3147. Appleby JL, Parkinson JS, Bourret RB (1996) Signal transduction via the multistep phosphorelay: not necessarily a road less traveled. Cell 86: 845–848. Arons S, Abbas A, Adams C, Fenton A, O’GARA F (2000) A regulatory RNA (PrrB RNA) modulates expression of secondary metabolite genes in Pseudomonas fluorescens F113. Journal of Bacteriology 182: 3913-3919.  Arshad MU, Anjum FM, Zahoor T (2007) Nutritional assessment of cookies supplemented with deffated wheat germ. Food chemistry 102:123-128. Ashofteh F, Ahmadzadeh M, Fallahzadeh-Mamaghani V (2009) Effect of mineral components of the medium used to grow biocontrol strain UTPF61 of Pseudomonas fluorescens on its antagonistic activity against Sclerotinia wilt of sunflower and its survival during and after the formulation process. Journal of Plant Pathology 91: 607-613. Behravan J, Fazly Bazzaz BS, Salimi Z (2003) Optimization of dextran production by Leuconostoc mesenteroides NRRL B-512 using cheap and local sources of carbohydrate and nitrogen. Biotechnology Applied Biochemistry 38: 267-269. Beeson WM, Lehrer WP, Woods E (1947) Peas, supplemented with wheat germ or corn germ as a source of protein for growth. Journal of Nutrition P. 266. Bull CT, Duffy B, Voisard C, De´fago G, Keel C, Haas D (2001) Characterization of spontaneous gacS and gacA regulatory mutants of Pseudomonas fluorescens biocontrol strain CHA0. Antonie Leeuwenhoek 79: 327-336. Chancey ST, Wood DW, Pierson IIILS (1999) Two–component transcriptional regulation of N–acyl–homoserine lactone production in Pseudomonas aureofaciens. Applied and Environmental Microbiology 65: 2294-2299. Costa E, Teixdo N, Usall J, Atares E, Vinas I (2001) Production of the biocontrol agent Pantoea agglomerans strain CPA-2 using commercial products and by-products. Applied Microbiology and Biotechnology 56: 367-371. Daharani Aiyer PV (2004) Effect of C:N ratio on alpha amylase production by Bacillus licheniformis SPT 27. African Journal of Biotechnology 3: 519-522. Duffy BK, De´fago G (1999) Environmental factors modulating antibiotic and siderophore biosynthesis by Pseudomonas fluorescens biocontrol strains. Applied and Environmental Microbiology 65: 2429-2438. Duffy BK, De´fago G (2000) Controlling instability in gacS–gacA eegulatory genes during inoculant production of Pseudomonas fluorescens biocontrol strains. Applied and Environmental Microbiology 66: 3142–3150. Dunford NT, Zhang M (2003) Pressurized solvent extraction of wheat germ oil. Food Research International 36: 905-909. Duong F, Lazdunski A, Cami B, Murgier M (1992) Sequence of a cluster of genes controlling synthesis and secretion of alkaline protease in Pseudomonas aeruginosa: relationships to other secretory pathways. Gene 121:47-54. Haas D, De´fago G (2005) Biological control of soil–borne pathogens by fluorescent pseudomonads. Nature Review of Microbiology 3: 307-319. Haas D, Keel C (2003) Regulation of antibiotic production in root colonizing Pseudomonas spp. and relevance for biological control of plant disease. Annual Review of Phytopathology 41: 117-153. Heeb S, Haas D (2001) Regulatory Roles of the GacS/GacA two–component system in plant associated and other gram–negative bacteria. International Society for Molecular Plant–Microbe Interactions 14: 1351-1363. Imrie FKE (1969) Fermentation media. Sugar and molasses. Process Biochemistry p. 34-35. Kademi A, Fakhreddine L, Abdelkader NA, Barrati JC (1999) Effect of culture conditions on growth and esterase production by the moderate thermophile Bacillus circulans MAS2. Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology 23: 188-193. Kim DS, Cook RJ, Weller DM (1997) Bacillus sp. L324–92 for biological control of three root diseases of wheat grown with reduced tillage. Phytopathology 87: 551-558. Kumar p, Yadava RK, Gollen B, Kumar S, Verma RK, Yadav S (2011) Nutritional contents and medicinal properties of wheat: a review. Life sciences and medicine research volume: LSMR-22. Lagzian A, Saberi Riseh R, Khodaygan P, Sedaghati E, Dashti H (2013a) Introduced Pseudomonas fluorescens VUPf5 as an important biocontrol agent for controlling Gaeumannomyces graminis var. tritici the causal agent of take-all disease in wheat. Archives of Phytopathology and Plant Protection 46(17): 2104-2116. Lagzian A, Saberi Riseh R, Khodaygan P, Sedaghati E, Dashti H (2013b) Biocontrol performance evaluation of spontaneous mutants of Pseudomonas fluorescens VUPf5 generated during proliferation. Archives of Phytopathology and Plant Protection 46(17): 2087-2095. Ma CY, Liu WS, Kwok KC, Kwok F (1997)Isolation and characterization of proteins from soymilk residue (okara). Food Research International 29: 799-805. Maddula VSRK, Zhang Z, Pierson EA, Pierson LSIII (2006) Quorum sensing and phenazines are involved in biofilm formation by Pseudomonas chlororaphis strain 30–84. Microbial Ecology 52: 289-301. Mondragon V, Franco B, Jonas K, Suzuki K, Romeo T, Melefors O, Georgellis D (2006) pH-dependent activation of the BarA-UvrY two-component system in Escherichia coli. Journal of Bacteriology 188:8303-8306. Oliver JD (2000) The viable but nonculturable state and cellular resuscitation. In: Bell CR, Brylinsky M, Johnson–Green P, editors. Microbial biosystems: new frontiers. Atlantic Canada Society for Microbial Ecology, Halifax, Nova Scotia, Canada; p: 723-730. Poritsanos N, Selin C, Fernando WGD, Nakkeeran S, De kievit TR (2006) A GacS deficiency does not affect Pseudomonas chlororaphis PA23 fitness when growing on canola, in aged batch culture or as a biofilm. Canadian Journal of Microbiology 52: 1177-1188. Raaijmakers JM, Vlami M, de Souza JT (2002) Antibiotic production by bacterial biocontrol agents. Antonie van Leeuwenhoek. Journal of Microbiology 81: 537-547. Romeo T, Gong M, Liu MY, Brun-Zinkernagel AM (1993) Identification and molecular characterization of csrA, a pleiotropic gene from Escherichia coli that affects glycogen biosynthesis, gluconeogenesis, cell size, and surface properties. Journal of Bacteriology, 175(15): 4744-4755. Romeo T (1998) Global regulation by the small RNA-binding protein CsrA and the non-coding RNA molecule CsrB. MolecularMicrobiology 29(6): 1321-1330. Roshandel S, Taheri E, Babai GH, Morshedi E (2006) Health management of potato. Hadian. Iran. (In Persian). Safari Asl F, Rohani H, Falahati Rastegar M, Jahanbakhsh V (2010) Effect of carbon and nitrogen sources on the growth and antifungal activity of Bacillus subtilis against Pythium aphanidermatum. Journal of Plant Protectection 24: 53-61. (In persian). Su J-J, Zhou Q, Zhang H-Y, Li Y-Q, Huang X-Q, Xu Y-Q (2010) Medium optimization for phenazine-1-carboxylic acid production by a gacA qscR double mutant of Pseudomonas sp. M18 using response surface methodology. Bioresource Technology 101: 4089-4095. Thomashow L, Weller D (1996)Current concepts in the use of introduced bacteria for biological disease control: mechanisms and antifungal metabolites. International Society for Molecular Plant–Microbe Interactions 1: 187-235. Tomenius H, Pernesting AK, Mendenz-Catala CF, Georgellis D, Nomrmark S, Melefors O (2005) Genetic and functional characterization of the Escherichia coli BarA-UvrY two-component system: point mutations in the HAMP linker of the BarA sensor give a dominant-negative phenotype. Journal of Bacteriology 187: 7317-7324. Vazquez M, Santos V, Parajo JC (1997) Effect of the carbon source on the carotenoid profiles of Phaffia rhadozyma strains. Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology 19: 263-268. Wang D, Lee S-H, Seeve C, Myoung YuJ, Pierson LSIII, Pierson EA (2013) Roles of the Gac-Rsm pathway in the regulation of phenazine biosynthesis in Pseudomonas chlororaphis 30-84. MicrobiologyOpen 2(3): 505–524. Wolfe AJ (2005) The acetate switch. Microbiology and Molecular Biology Reviews 69:12-50.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2014.53853 کنترل بیولوژیک آفات فراسنجه‌های زیستی بالتوری سبز( Chrysoperla carnea (Stephens با تغذیه از پسیل معمولی پستة تیمار‌شده با سه عصارة گیاهی و آفت‌کش آمیتراز فراسنجه‌های زیستی بالتوری سبز( Chrysoperla carnea (Stephens با تغذیه از پسیل معمولی پستة تیمار‌شده با سه عصارة گیاهی و آفت‌کش میرزایی فرانک دانشجوی سابق کارشناسی ارشدگیاه پزشکی، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه ولی‌عصر رفسنجان سمیع محمد امین دانشیار گروه گیاه‌پزشکی، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه ولی‌عصر رفسنجان الهیاری حسین دانشیار گروه گیاه‌پزشکی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج 23 09 2014 3 2 151 164 14 01 2015 10 03 2015 Copyright © 2014, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2014 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_53853.html

بالتوری سبز معمولی Chrysoperla carnea (Neuroptera: Chrysopidae) یکی از دشمنان طبیعی مهم حشرات آفت است. در این پژوهش، تأثیرات جنبی چند عصارة گیاهی شامل استبرق Calotropis procera (Willd.) R. Br. (Asclepiadaceae)، شاه‌تره Fumaria parviflora Lam. (Fumariaceae) و اکالیپتوس Eucalyptus spp. (Myrtaceae) و آفت‌کش آمیتراز بر پارامترهای زیستی لاروهای سن دوم بالتوری سبز بررسی شد. آزمایش‌ها در دمای 2±26 درجة سلسیوس، رطوبت نسبی 5±65 درصد و دورة نوری 16 ساعت روشنایی و 8 ساعت تاریکی به دو روش تیمار تماس موضعی و گوارشی با تغذیه از پسیل معمولی پسته،  Agonoscena pistaciae Burckhardt and Lautererانجام شد. نتایج نشان داد که طول دورة رشدی (لارو سن دوم تا حشرة کامل) در شرایط تیمار لاروها به روش گوارشی با عصارة گیاهی استبرق و آفت‌کش آمیتراز نسبت به تیمار آن‌ها با آب (شاهد) طولانی‌تر بود و بین تیمارها با شاهد اختلاف معنی‌دار وجود نداشت. نتایج نشان داد که بیشترین زنده‌مانی برای حشرات کامل 127 روز برای تیمار اکالیپتوس و کمترین آن 110 و 113 روز به‌ترتیب برای تیمار آمیتراز و استبرق مشاهده شد. در تیمار تماس موضعی اثر تیمارها بر دورة رشد پیش از بلوغ معنی‌دار نبود. دورة پیش از بلوغ در تیمار شاتره با 76/22 روز بیشترین و در تیمار استبرق با 96/21 روز کمترین بود. نتایج نشان داد که اثر تغذیة شکارگر از پسیل‌های آلوده به عصاره‌ها و آفت‌کش آمیتراز بیشتر از تماس موضعی با آن‌هاست. افزایش اثر تیمارها روی مراحل رشدی شکارگر با افزایش عمر، آثار زیرکشندگی تیمارها را نشان می‌دهد. در راهبرد مدیریت تلفیقی آگاهی از این‌گونه تأثیرات کمک خواهد کرد که در به‌کارگیری ترکیبات ایمن برای دشمن طبیعی به تمام جنبه‌های اثر ترکیب توجه شود.

 بالتوری سبز پسیل معمولی پسته تأثیرات جنبی دورة رشد Abbott W (1925) A method of computing the effectiveness of an insecticide. Journal of Economic Entomology18, 265-267. Ahmad A (1999) Demographic toxicology as a method for studying the dicofol two spotted spider mite (Acari: Tetranychidae) system. ٍEconomic Entomology- 76: 239- 242. Alizadeh A, Talebi K, Hosseininaveh V, Ghadamyari M (2011)Metabolic resistance mechanisms to phosalone in the common pistachio psyllid, Agonoscena pistaciae (Hem: Psyllidae). Pesticide Biochemistry and Physiology 101 (2): 59-46. Basirat M, Afshari MR (2004) An investigation on the effect of thiamethoxam on Agonoscena pistaciae and its side-effects on Psyllaephagus pistacia and Oenopia conglobata. 16th Iranian Plant Protection Congress, 28 Aug.-1 Sept. Tabriz-Iran, 223(In Persian with English summary) Casafe T (2007) Camara argentina de sanidad agropecuaria y fertilizantes: Guia de productos fitosanitarios. Buenos Aires. Argentina. Cordeiroa EMG, Correaa AS, Venzonb M, Guedesa RNC (2010) Insecticide survival and behavioral avoidance in the lacewing Chrysoperla externa and Ceraeochrysa cubana. Economic Entomology 102: 170- 176. Croft BA (1990) Arthropod Biological Control Agents and Pesticides, John Wiley, New York. Danay-Tous AH, Farazmand H, Oliaei-Torshiz A, Sirjani M (2014) Effect of red pepper and garlic extract on pistachio psylla nymph, Agonoscena pistaciae, in field conditions. Biocontrol in Plant Protection1 (2): 91-99. De Bach P, Rosen D (1991) Biological Control by Natural Enemies. Cambridge University Press Desneux N, Denoyelle R, Kaiser L (2006) A multi-step bioassay to assess the effect of the deltamethrin on the parasitic wasp Aphidius ervi. Chemosphere 65: 1697-1699. Dohmen GP (1998) Comparing pesticide effects on beneficials in a sequential testing scheme. In: Haskell PT, McEwen P (eds) Ecotoxicology pesticides and beneficial organisms. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands, pp. 191–201. Ghaffari D, Tirgari S (2004) Repellency effect of three plant’s extracts against paederus beetles, the agent of linear dermatitis (Col.: Staphylinidae). 16th Iranian Plant Protection Congress 28 Aug. 1 Sept. Tabriz-Iran, 187 (In Persian). Gholami T, Samih MA, Nejati M (2013) Effect of two extraction methods of Rubia tinctorum on mortality of cotton whitefly Bemisia tabaci (Genn.). 2nd National Congress on Medicinal Plants.15, 16 May, Tehran- Iran, 1280. Grafton-Cardwell EE, Hoy MA (1985) Intraspecific variability in response to pesticides in the common green lacewing, Chrysoperla carnea Stephens (Neuroptera: Chrysopidae). Hilgardia 53: 1–31. Hamilton GC, Lashomb GH (1997) Effect of insecticides on two predators of the colorado potato beetle (Coleoptera: Chrysomellidae). Florida Entomologist 80: 10-23. Hariri Moghadam F, Moharramipour S (2010) Effect of essential oil from Eucalyptus salmonophloia and Eucalyptus kingsmillii on egg stage of two spotted spider mite, Tetranychus urticae Koch. 19th Iranian Plant Protection Congress 31 July.3 August, Tehran. 345 (In Persian). Heidari H (1996) The Key of Chrysopa and Suarius (Neuroptera:Chrysopidae) species collected from Iran. Journal of Entomological Society of Iran 9(1,2): 47-54. Hummelbrunner LA, Isman MB (2001) Acute, sublethal, antifeedant and synergic effects of monoterpenoid essential oil compounds on the tobbaco cutworm, Spodoptera litura (Lepidoptera: Noctuidae). Journal of Agricultural and Food Chemistry, 49, pp. 715-720. Hydron SB, Whitcomb WH (1979) Effects of larval diet on Chrysopa rufiboris. Florida Entomologist 62: 293-298. Irannejad MK, Samih MA, Talebi Jahromi K, Alizadeh A (2012b) Investigation on the effects of some pesticides and plant extracts on life table of Chrysoperla carnea (Stephens) (Neu.: Chrysopidae). Plant protection Science 43(1): 33-46 (In Persian with English summary). Irannejad MK, Samih MA, Talebi Jahromi K, Alizadeh A (2012a) The Effect of Some Pesticides and Plant Extracts on Functional Response of Chrysoperla carnea (Stephens) to Different Densities of Agonoscena pistaciae . Journal of Plant Protection (Agricultural Science and Technology) 26 ( 3): 316-326.(In Persian) Jafari Nodooshan A, Biat asady H, Moharrami S, Mirzaie R. (2000) Identification of lacewings in Kerman pistachio orchards and determining of the efficiency Chrysoperla carnea (Stephens) in control of psylla. 14th Iranian Plant Protection Congress. 102 p. (In Persian with English summary). Jbilou R, Ennabili A, Sayah F (2006) Insecticidal activity of four medicinal plant extracts against Tribolium castaneum (Herbst) (Coleoptera: Tenebrionidae). African Journal of Biotechnology 5: 936–940. Joyande A (2000) Mass production of common green lacewing Chrysopa carnea (Steph.) (Neu.: Chrysopidae) new methods in group rearing of the larvae. 14th Iranian Plant Protection Congress, Aug., Isfahan University of Technology-Iran, 176 (In Persian with English summary) Khajehoseini M, Samih MA, Mahdian K (2014) Investigation on the effects of several plant extracts and thiamethoxam on two Sex life table of Chrysoperla carnea (Stephens) (Neu.:Chrysopidae) in laboratory conditions. Journal of Plant Protection 28(1): 125-137. (In Persian with English summary) Khajehoseini M, Samih MA, Mahdian K, Alizadeh A (2013) The side effects of several plant extracts and thiamethoxam on biological parameters of common green lacewing Chrysoperla carnea (Stephens) (Neu.:Chrysopidae) under laboratory conditions. Plant Pests Research 3(1): 21-32. (In Persian with English summary). Koschier E, Sedy K (2003) Labiate essential oils affecting host selection and acceptance of Thrips tabaci. Crop Protection 22(7): 929-934. Kumar K, Santharan (1999) Laboratory evaluation of imidaclopride against tricograma chilonis Ishii and Chrysoperla carnea (Stephens). Journal of Biological Control 13: 73-78. Maciel MV, Morais SM, Bevilaqua CML, Camurca ALF, Costa CTC, Castro CMS (2006) Ovicidal and larvicidal activity of Melia azedarach extracts on Haemonchus contortus. Veterinary Parasitology 140, 98- 104. Mahdavi Arab N, Ebadi R, Hatami B, Talebi Jahromi Kh (2008) Insecticidal effect of some plant extracts on Callosobrochus maculates F. in laboratory and Laphigma exigua H. in green house. Journal of Science and Technology of Agriculture and Natural Resources 11(42):221-234. (In Persian). Majnon Hosseini N, Davazdah Emami S (2007) Cultivation and production of certain herbs and spices. University of Tehran Publications, pp: 300. Mansouri Jajaei Sh, Maroof A (2004) Study on control Callosobruchus maculates with four medicinal plants: neem oregano eucalyptus and garlis. 16th Iranian Plant Protection Congress 28 Aug. 1 Sept. Tabriz-Iran, 193 (In Persian). Marouf A, Sangari S, Jabbari1 L (2007) An investigation on fumigant effect of the extract of Origanum vulgare (Lamiales: Lamiaceae) for control of two stored-product beetles. 27:2, 29-41(In Persian with English summary). McEwen PK, New TR, Whittington AE (2001) Lacewings in the Crop Environment. Cambridge University Press, Cambridge, 546 p. MedinaMP, Budia F, Tirry L, Smagghe G, Vinuela E (2001) Compatibility of spinosad, tebufenozide and azadirachtin with eggs and pupae of the predator Chrysoperla carnea (Stephens) under laboratory conditions. Biocontrol Science and Technology 11: 597-610. Medina MP, Budia F, Tirry L, Smagghe G, Viñuela E (2003) Effects of three modern insecticides, pyriproxyfen, spinosad and tebufenozide, on survival and reproduction of Chrysoperla carnea adults. Annals of Applied. Biology 142: 55-61. Mgocheki N, Addison P (2009) Effect of contact pesticides on vine mealybug parasitoids, Anagyrus sp. near pseudococci (Girault) and Coccidoxenoides perminutus (Timberlake) (Hymenoptera: Encyrtidae). South African Journal of Enology and Viticulture, 30: 2. Michaud JP, McKenzie CL (2004) Safety of a novel insecticides, sucrose octanoat, to beneficial insects in Florida citrus. Florida Entomologist87(1): 6-9. Mirzaii F, Samih MA, Irannezhad MK, Shabani Z, Alizadeh A (2011) Lethal effects plant extracts Fumaria parviflora Lam. and Eucalyptus camaldulensis and insecticides, amitraz on Agonoscena pistaciae Burckhardt and Lauterer under laboratory conditions. 63th international symposiums on crop protection, Gent-Belgium May 24th.–May 24th. 151pp. Papachristos DP, Stamopoulos DC (2002) Toxicity of vapours of three essential oils to the immature stages of Acanthscelides obtectus Say (Coleoptera: Bruchidae). Stored Products Research, 38, 365-373. Pascual-villalobos MS, Robledo A (1998) Screening for anti-insect activity in Mediterranean plants. Journal of Industrial Crop and Product 1: 115-120. Peveling R, Ould Ely S (2006) Side-effect of botanical insecticides derived from Meliaceae on coccinellid predators of the date palm scale. Crop Protection 25:1253-1258. Pree DJ, Archibald DE., Morrison RK (1989) Resistance to insecticides in the common green lacewing Chrysoperla carnea (Neuroptera: Chrysopidae) in southern Ontario. Journal of Economic Entomology, (USA82(1: 29-34. Robertson JL, Preisller HK (1992)Pesticide Bioassays with Arthropods. CRC Press, USA. Rouhani M, Samih MA (2012) Mortality effect of plant extracts with pesticide on common pistachio psylla, Agonoscena pistaciae. Archives Des Sciences 65(8): 452-460. Rouhani M, Samih MA, Esmaiilizadeh M, Izadi H (2011) Effect of imidacoloprid and thiamethoxam and salinity on Agonoscena pistaciae Burckhardt and Lauterer in pistachio orchards. Global Conference on Entomology-(GCE), March 5-9, Chiang Mai, Thailand 418 Said Mandour N (2008) Influence of spinosad on immature and adult stages of Chrysoperla carnea (Stephens) (Neuroptera: Chrysopidae). BioControl54: 93-102. Samih MA, Alizadeh A, Saberi Riseh R (2005) Pistachio Pests and Diseases in Iran and Their IPM. Jahad Daneshgahi-Tehran Press. (In Persian). Schneider MI, Sanchez N, Pineda S, Chi H, Ronco A (2009) Impact of glyphosate on the development, fertility and demography of Chrysoperla externa (Neuroptera: Chrysopidae): Ecological approach.Chemosphere 76 (10): 1451-1455. Schuster DJ, Stansly PA (2000) Response of two lacewing species to biorational and broad-spectrum insecticides. Phytoparasitica 28(4): 297-304. Shabani Z (2012) Biology and life table of Chrysoperla carnea (Neuroptera: Chrysopidae) on Agonoscena pistaciae Burckhardt and Lauterer treat with some insecticides and Caiotropis procera under laboratory conditions. M.Sc. Thesis of Agricultural Entomology, Vali-e-Asr University, 150p. Shabani Z, Samih MA, Irannezad MA, Mirzaii F (2011) Insecticidal efficacy of acetamiprid, hexaflumuron and Calotropis procera extract on Agonoscena pistaciae Burckhardt and Lauterer under laboratory conditions. Global Conference on Entomology, March 5-9, Chiang Mai, Thailand. 481p. Shukla A, Pathak SC, Agarwal RK (1997) Effect of some plant odours in the breeding environment on fecundity and hatching of okra shoot and fruit borer, Earias vittella (Fab.) under laboratory conditions. Crop Research Hisar 13 (1): 157-161. Taghizadeh-Sarokalaii A, Moharramipour S (2010) Fumigant toxicity of essenssial oil, Thymus persicus (Lamiaceae) and Prangos acaulis (Apiaceae) on Callosobruchus maculatus (Coleoptera: Bruchidae). Plant Protection Science 33 (1): 55-68. (In Persian). Talebi Jahromi Kh (2006). Pesticides Toxicology. University of Tehran Press. (In Persian). Tauber MJ, Tauber CA, Daane KM, Hagen KS (2000) Commercialization of predators: recent lessons from green lacewings (Neuroptera: Chrysopidae: Chrysoperla). Annual Review of Entomology 46: 26-38. Valadares GR, Ferreyra D, Defago MT, Carpinella MC, Palacios S (1999) Effects of Melia azedarach on Triatoma infestans. Fitopatologia Brasileira 70: 421- 424. Viana Ramos M, Pavia Banderia G, Teixeria de Freitas C, Nogueira N, Alencar N, Sousa P, Carvalho A (2006) Latex constituents from Calotropis procera (R. Br.) display toxicity upon egg hatching and larvae of Aedes aegypti (Linn.). Mem Inst Oswaldo cruz, Rio de Janeiro101: 503-510. Vogel AI (1978) Text Book of Practical Organic Chemistry. The English Language Book Society and Longman: London, 1368. Vogt H, Bigler F, Brown K, Candolfi MP, Kemmeter F, Kuhner Ch, Moli M,Travis A, Ufer A, Vineula E, Wiadburger M, Waltersdorfer A (2000) Laboratory method to test effects of plant protection products on larvae of Chrysoperla carnea (Stephen) (Neuroptera: Chrysopidae). pp. 27-44 in Condolfi MP, Blomel S, Forster R (Eds) Guidelines to evaluate side effects of plant protection products to non-target arthropods. IOBC, BART, and EPPO Joint Initiative. Wang Y J, Zeho DM, Sun RJ, Cang L, Hao XZ (2006) Cosorption of zinc and glyphosate on two soils with different characteristics. Journal of Hazardous Materials 137: 76-82. Zargari A (1992) Medicinal Plants. University of Tehran Press. (In Persian).
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2014.53960 کنترل بیولوژیک آفات بهینه سازی فرایند تولید جدایه بومی (6R) باکتری Bacillus thuringiensis در فرمانتور آزمایشگاهی بهینه سازی فرایند تولید جدایه بومی (6R) باکتری Bacillus thuringiensis در فرمانتور آزمایشگاهی صابری فاطمه فارغ‌التحصیل کارشناسی ارشد مهندسی شیمی ـ بیوتکنولوژی، دانشگاه آزاد، واحد علوم و تحقیقات مرزبان رسول استادیار پژوهش، مؤسسة تحقیقات گیاه‌پزشکی سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ولنجک، تهران ارجمند مهدی دانشیار، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد تهران جنوب، گروه مهندسی شیمی، تهران 23 09 2014 3 2 165 172 03 12 2014 06 03 2015 Copyright © 2014, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2014 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_53960.html

امروزه، کنترل بیولوژیک جایگاه بسیار مهمی در مدیریت کنترل آفات به خود اختصاص داده است. یکی از موارد کنترل بیولوژیک استفاده از باکتریBer.  Bacillus thuringiensisاست که در تولید بیش از 60 درصد آفت‏کش‏های میکروبی و تعداد زیادی از گیاهان تراریختۀ (Bt-crops) مقاوم به حشرات کاربرد دارد. به‌طور کلی عملکرد خوب و مناسب برخی فرآورده‌های تجاری باکتری Bt در کنترل حشرات آفت، به‌دلیل غلظت مناسب دلتا‌ اندوتوکسین و اسپور در فرآوردة نهایی است. میزان غلظت این دو پارامتر وابستگی شدیدی به ترکیب محیط کشت و شرایط محیطی تولید باکتری دارد. در این تحقیق بهینه‌سازی شرایط محیطی باکتری Bt شامل pH، دما و میزان هوادهی، بررسی شد. برای کاهش تعداد آزمایش‌ها از روش آماری تاگوچی و نرم‌افزار  Qualitek 4استفاده شد. نتایج نشان داد که شرایط بهینه برای این جدایه شامل دمای 28 درجة سلسیوس، pH 5/7 و میزان اکسیژن 80 درصد اشباع است. در این شرایط بهینه، میزان اسپور باکتری 1012×5/1 اسپور در میلی‌لیتر به‌دست آمد. آنالیز تأثیر متقابل پارامترهای مؤثر در فرآیند بر یکدیگر نشان داد که دما و میزان هوادهی با مقدار 92/39 درصد و دما و pH با مقدار 25/0 درصد به‌ترتیب بیشترین و کمترین تأثیر متقابل را داشتند.

 اکسیژن دما شرایط بهینه Bacillus thuringiensis pH Brar SK, Verma M, Barnabe S, Tyagi RD, Valero JR (2005) Impact of Tween 80 during Bacillus thuringiensis fermentation of wastewater sludges. Process Biochemistry 40: 2695-2705. El-Bendary MA (2006) Bacillus thuringiensis and Bacillus sphaericus biopesticides production. Journal of Basic Microbiology 46(2): 158-170. Foda MS, Salama HS, Selim M (1985) Factors affecting growth and physiology of Bacillus thuringiensis. Applied Microbiology and Biotechnology 22: 50-52. Ghribi D, Zouari N, Trabelsi H, Jaoua S (2007) Improvement of Bacillus thuringiensis delta-endotoxin production by overcome of carbon catabolite repression through adequate control of aeration. Enzyme and Microbial Technology 40(4): 614-622. Holmberg A, Sievänen R, Carlberg G (1980) Fermentation of Bacillus thuringiensis for exotoxin production: Process analysis study. Biotechnology and Bioengineering 22(8):  1707–1724. Huang KM, Badger, Haney K, Evans SL (2007) Large scale production of Bacillus thuringiensis PS149B1 insecticidal proteins Cry34Ab1 and Cry35Ab1 from Pseudomonas fluorescens. Protein expression and purification 53(2): 325-330. Icgen Y, Icgen B, Ozcengiz G (2002) Regulation of crystal protein biosynthesis by Bacillus thuringiensis: I. Effects of mineral elements and pH. Research in Microbiology 153(9): 599-604. Izadyar S, Askari H, Talebi KH, Rezapanah M (2005) Bioassay of some Iranian strains of Bacillus thuringiensis (Bacteria: Bacillaceae) (Lep.:Noctuidae), Applied Entomology and Phytopathology 73(1): 93-104. (In Persian) Marzban R (2002) Comparative bioassay of native Isolates of Bacillus thuringiensis and B. thuringiensis subsp. Kurstaki on Indian meal moth. Applied Entomology and Phytopathology 70(1): 83-90. (In Persian) Marzban R, Salehi JG (2006) Distribution of Bacillus thuringiensis in the Agricultural soils of Iran. Biotechnology, Agriculture and the Food Industry (ISBN: 1-60021-040-6), Nova Science Publishers, Inc. (New York) USA: 95-100. Ozkan M, Dilek, FB, Yetis,U, Ozcengiz G (2003) Nutritional and cultural parameters influencing antidipteran delta-endotoxin production. Research in Microbiology 154(1): 49-53. Rowe GE (1990) Central metabolism of Bacillus thuringiensis during growth and sporulation. Ph.D. thesis, The University of Western Ontario, London, Ontario, Canada. Rowe GE, Margaritis A (1987) Bioprocess developments in the production of bioinsecticides by Bacillus thuringiensis. CRC Critical Reviews in Biotechnology 6(1): 87-127. Rowe GE, Margaritis A (2004) Bioprocess design and economic analysis for the commercial production of environmentally friendly bioinsecticides from Bacillus thuringiensis HD-1 kurstaki. Biotechnology and Bioengineering 86(4): 377-388. Sikdar DP, Majumdar MK, Makumdar SK (1991) Effect of minerals on the production of the delta endotoxin by Bacillus thuringiensi. Biotechnology Letters 13(7): 511- 514. Yezza A, Tyagi RD, Vale´ro JR, Surampalli RY (2005) Production of Bacillus thuringiensis based biopesticides in batch and fed-batch cultures using wastewater sludge as a raw material. Journal of Chemical Technology and Biotechnology 80(5): 502-510. Yousten AA, Wallis DA (1987) Batch and continuous culture production of the mosquito larval toxin of Bacillus sphaericus 2362. Journal of Industrial Microbiology 2: 277-283. Zuoari N, Jaoua S (1999) Production and characterization of metalloproteases synthesized concomitantly with d-endotoxin by Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki strain grown on gruel-based media. Enzyme and Microbial Technology 25(3): 364-371.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی 2322-2883 پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی 150 10.22059/jbioc.2014.54526 unavailable چکیده های انگلیسی 23 09 2014 3 2 1 8 18 08 2015 18 08 2015 Copyright © 2014, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران - موسسه تحقیقات کنترل بیولوژیک آفات و بیماریهای گیاهی. 2014 https://jbiocontrol.ut.ac.ir/article_54526.html

unavailable